Способ стерилизации ферментных препаратов, используемых для получения протопластов
Иллюстрации
Показать всеРеферат
Изобретение относится к биотехнологии и касается стерилизации ферментных препаратов, используемых для получения растительных протопластов. Целью изобретения является ускорение стерилизации при снижении трудоемкости. Способ состоит в том, что ферментные препараты стерилизуют ионизирующим излучением <SP POS="POST">6</SP>°Со в дозе 1,0 - 2,0 мР. 2 табл.
СОЮЗ СОВЕТСКИХ
СОЦИАЛИСТИЧЕСКИХ
РЕСПУБЛИК
IsI>s С 12 М 5/04
ГОСУДА Р СТ В Е ННЫ Й КОМИТЕТ
ПО ИЗОБРЕТЕНИЯМ И ОТКРЫТИЯМ
ПРИ ГКНТ СССР
ОПИСАНИЕ ИЗОБРЕТЕНИЯ
К АЗТОРСКОМУ СВИДЕТЕЛЬСТВУ (21) 4664456/13 (22) 25.01.89 (46) 30.08.91. Бкл. М 32 (71) Центральная генетическая лаб<.:ат.,;.ия им. И.В. Мичурина (72) Н.M.— X. Нафталиев и fi.À. д,:,о;. i:, ;àí (53) 578,085,23 (088.8) (56) Сидоров В.А. и др. Соматическ.ъ:".бридизация пасленовых, Киев: Наукова .", мка, 1985, с. 49-50.
Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано в области культуры тканей и клеток. генетики и селекции для получения качественных протопластов растений, В биотехнологии для получения качественных протопластов растений большое значение имеет сохранение высокой стерильности и активности ферментпы> препаратов, растворяющих клеточные оболочки растений. Основное требование, предъявляемое к стерильности, состоит в том, чтобы все выделенные протопласты, культивируемые на искусственной питательной среде, были не заражены инфекционной микрофлорой и имели шаровидную форму с равномерным распределением хлоропластов.
Цель изобретения — ускорение стерилизации при снижении трудоемкости.
Способ состоит в том. что при стерилизации ферментных препаратов на них воздействуют ионизирующим излучением Со
60 в дозах от 1,0 до 2,0 м Р при мощности
12,0 — 18,0 P/ñ.
50 1673596 А1 (54) СПОСОБ СТЕРИЛИЗАЦИИ ФЕРМЕНТHhlX ПРЕПАРАТОВ. ИСПОЛЬЗУЕМЫХ
ДЛЯ ПОЛУЧЕНИЯ ПРОТОПЛАСТОВ (57) Изобретение относится к биотехнологии и касается стерилизации ферментных препаратов, используемых для получения растительных протопластов. Целью изобретения является ускорение стерилизации при снижении трудоемкости. Способ состоит в том, что ферментные препараты стерилизуют ионизирующим излучением Со в
60 дозе 1,0-2,0 мР, 2 табл.
В данном диапазоне мощности гаммаоблучения при заданной экспозиционной дозе облучения эффект в пределах погрешности измерения не меняется.
Способ осуществляется следующим образом.
По 1 г сухого фермента, например
"Pectinase", помещают в пенициллиновые пузырьки и облучают ионизирующим излучением " Со на установке РХМ ) 20 в дозах
1,0 — 2,0 мР при мощности 12,0-18,0 Р/мин.
Пос:e сблучения фермент из пенициллиновых пуырьков растворяют в О," М растворе сахароэы, которую также предварительно стерилизуют автоклавированием при 1,0 атм в течение 20-25 мин. Для гидролизации клеточных оболочек в суспензию растительных клеток наливают стерильный ферментный раствор и инкубируют в термостате при 2628 С б — 16 ч. Осаждение протопластов осуществляют с помощью центрифуги, Способ иллюстрируется следующими примерами.
Пример 1, Изучают влияние облучения Совдозах0,25Р;0,50Р;1,0Р:20 и
1673596
3,0 мР при мощности 18,0 Р/с на степень стерилизации ферментного препарата
"Pectlnase", взятого в 1;(>-ной концентрации, и влияние стирилизации этого фермента на качественный и количественный выход изолированных протопластов из клеток каллусной ткани земляники сорта "Рубиновый кулон".
Опыт ставят в трехкратной повторности.
Ферментные растворы, облученные указанными дозами, предварительно ставили в термостат на 5 — 6 сут при 28 С для выявления степени стерильности, В качестве контроля служил ферментный препарат
"Pectlnase", растворенный в 0,5 М растворе сахароэы, стерилизацию которого проводили фильтрованием через мембранные фильтры — Milli pore.
Действие ионизирующего излучения на стерилизацию ферментного препарата (мощность дозы 12,0-18,0 P /с) приведено в табл. 1.
Как показывают исследования, доза облучения ферментного препарата 0,25 и
0,50 мР не приводит к желаемому результату, так как раствор на 5 — 6 — и день покрывается плесенью. Ферментные растворы, облученные дозами 1,0; 2,0 P и 3,0 мР, являются стерильными и их используют в дальнейших исследованиях по выделению изолированных протопластов земляники.
Наиболее оптимальной дозой облучения, которая лучше всего стерилизует ферментный препарат и сохраняет его активность, является доза 1,0 мР (см. табл. 1), Плотность жизнеспособных протопластов, выделенных при использовании ферментного раствора. облученного дозой
1,0 мР, составляет 1,5 10 п/мл.
Ферментные растворы, полученные от облучения фермента дозой 2,0 мР, приводят к снижению числа жизнеспособных протопластов и гибели значительной части протопластов, выделенных иэ клеток каллусной и листовой ткани земляники, Ферментные растворы, полученные от облучения фермента дозой 3,0 мР, полностью теряют свою активность и не пригодны для растворения клеточных оболочек.
Пример 2. Осуществляют аналогично примеру 1, только действие простерилизованных ферментных препаратов исследуют на тканях сливы.
Результаты представлены в табл. 1.
Пример ы 3 — 5. Аналогично примерам
1-2 исследуют действие препаратов на получение протопластов из тканей других плодовых культур, Результаты представлены в табл. 2, Предлагаемый способ стерилизации ф рментных препаратов позволяет не применять импортные мембранные фильтры для получения растительных протопластов, что сущетвенно ускоряет рабочий процесс и сокращает затраты труда и денежных средств.
Формула изобретения
Способ стерилизации ферментных препаратов, используемых для получения протопластов, включающий воздействие на них фактором, обеспечивающим высокий уровень стерильности при сохранении их активности, отличающийся тем, что, с целью ускорения стерилизации при снижении трудоемкости, на ферментные препараты воздействуют ионизирук;щим излучением бо
Со в дозе 1,0-2,0 мР при времени инкубации 16 ч.
1673596
Таблица!
Действие ионизирующего излучения на стерилизацию ферментного препарата
Мощность дозы 12,0 р/ик — 1Е,о р/сек
Источники выделения протопластов
Доза, мР
Характеристика препарата, плотность протопластов в зависимости от дозы облучения, и/мл
1,2 ° 10
Клетки каллусной ткани эемпяники "Рубиновый кулон"
Контроль
Millipore
0,25
Нестерильный
0,5
t,0
2>0
3,0
Клетки листовой ткани сливы сорта мРенклод колхозный>
Контроль
Nillipore
Нестерильный
0>25
2,0
3,0
Летальный исход
П р и м е ч а н и е. Фермент — "Pectinase"> 17,-ный раствор; осмотический стабилизатор — сахароза, 5,0 М; время инкубации 16 ч, Таблица 2
Доэа облучения, МР
Время инкубации> ч эатор
Клетки халлус- Целлобианой ткани яб- эа, 1>OI
Сахароэа
5,0 М лони сорта
"Ренет ЧерненЮ ко"
Cellulaва, 1,OI
Сахарова
5,0 И
Клетки листо- Пектофое- Л-Маннит 16 вой ткани смо- тидин, 0,4 М родины сорта 2,0I
"Память Иичуринан
0,25
0 5
1,0
2>0
3,0
Источник вьщеления протопластов
Клетки каллусной ткани груак сорта "Коперечка"
Зяа 4»>мента и концентра ция> Х
Осмотический стаби!
0,25
0,5 1, 0
2 0
3,0
0,25
0,5
1,0
2,0
3,0
Нестерильный
1,5 106
0,7 10
Летальный исход
0,1 10
Нестерильный
0,7 10
0,2 10
Характеристика препарата, плотность протолластов в эависнмости От Доэы Облучения> л/мл
Нестерильный
>>
4,0 10
6>0 10
Летальный исход
Нестерильный
I>
1,1 ° 10
О> 73 10
Летальный исход
Нестерильный
»
3,4 ° 10
2,4 10
Летальный исход