Способ культивирования ракообразных dарнniа маgnа sтr
Иллюстрации
Показать всеРеферат
Изобретение относится к гидробиологии и рыбоводству и может быть использовано для получения живого корма для личинок рыб. Целью изобретения является увеличение выхода биомассы ракообразных. Маточную культуру ракообразных вносят в культуральную среду с последующим введением кормовой суспензии микроводорослей и крезацина в концентрации от 20 до 200 мг/л, который вносят в среду через день. 3 табл.
СОЮЗ СОВЕТСКИХ
СОЦИАЛИСТИЧЕСКИХ
РЕСПУБЛИК (l9) (11) (s1)s А 01 К 61/00 .
ГОСУДАРСТВЕННЫЙ КОМИТЕТ
ПО ИЗОБРЕТЕНИЯМ И ОТКРЫТИЯМ
ПРИ ГКНТ СС Р
ОПИСАНИЕ ИЗОБРЕТЕНИЯ
К АВТОРСКОМУ СВИДЕТЕЛЬСТВУ (21) 4720983 /13 (22) 20.07,89 1 (46) 07.03.92, Бюл. М 9 (71) Кишиневский государственный универ.ситет и Иркутский институт органической химии CO АН СССР (72) M.Ã. Воронков, А.П. Гэрбэлэу, И.И.Дедк), В.П.Барышок и Н.В.Семенова (53) 639.36 (088.8) (56) Авторское свидетельство СССР
М 1007621, кл. А 01 К 67/00, 1983.
Изобретение относится к гидробио-. логии и рыбоводству и может быть использовано для получения живого корма для личинок рыб.
Известен способ культивирования ракообразных с применением солей хлорной кислоты формулы RCLO<. где R-Na, К, М9, Са, МН4, в качестве стимулятора.для повышения жизнестойкости и воспроизводительной.способности низших ракообразных.
Однако это средство характеризуется невысокой воспроизводительной способностью низших ракообразных.
Цель изобретения — повышение выхода биомассы ракообразных.
Способ осуществляют следующим образом.
В культуральную среду помещают маточную культуру 0aphnla тампа(возраст 1-2 дн) из расчета 10 экземпляров на 200 мл среды и вносят кормовую суспензию микроводорослей хлореллы. Предварительно готовят раствор крезацина исходной кон(54) СПОСОБ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ РАК0,ОБРАЗНЫХ DAPHNlA MAGNA STR. (57) Изобретение относится к гидробиологии и рыбоводству и может быть использовано для получения живого корма для личинок рыб.
Целью изобретения является увеличение выхода биомассы ракообразных. Маточную культуру ракообразных вносят в культураль. ную среду с последующим введением кормовой суспензии микроводорослей и крезацина в концентрации от 20 до 200 мг/л, который вносят в среду через день. 3 табл.
\ (У) центрации 10 г/л. В культуральную среду для получения растворов с содержанием крезацина 0,2 — 1000 мг/л (опыты 2 — 7) вносят объем раствора крезацина исходной концентрации, приведенные в табл. 1.
Ъ
Выращивание дафний ведут в течение
30 сут в накопительном режиме при ежедневном внесении корма. Смену среды и внесение крезацина осуществляют через день. Температура проведения опытов 18—
20 С, повторность тройная, По истечении 30 6д сут производят полное изъятие культуры, 11 подсчет численности и взвешивание.
Исследование выживаемости дафнии в среде крезацина проводят следующим образом. Первую модель, появившуюся в процессе опыта, просчитывают, известную часть отсаживают в новые емкости и таким образом ведут наблюдения за выживаемостью рачков в ряду трех поколений (табл. 2).
В табл. 2 приведены данные по выживаемости, плодовитости и массе особи дафний за 30 сут опыта, выраженные среднеариф1717032
Таблица 1 метическими величинами М со среднестатическим разбросом данных m. Как видно из табл. 2, выживаемость третьего поколения дафний удовлетворительна для растворов крезацина всех концентраций, однако самая высокая выживаемость наблюдается при содержании в среде 20 и 200 мг/л крезацина.
Влияние растворов крезацина на показатели жизнедеятельности дафний проявляется в сильно выраженном стимулировании воспроизводительной способности (росте численности) и массы особи дафний относительно контроля при концентрациях выше
2,0 мг/л. Наибольший стимулирующий эффект наблюдается при концентрации крезацина 200. мг/л, при которой численность дафний относительно контроля возрастает на 698%,.что в 17,5 раза выше численности дафний, полученной согласно известному способу. При этом масса особи возрастает по сравнению с контролем на
34;2) . Для культивирования дафний могут быть использованы концентрации крезацина 20-1000 мг/л (опыты 3-7), однако концентрации 20-200 мг/л (опыты 4 и 5) наиболее эффективны по показателям и экономичны.
В табл, 3 приведены сравнительные данные предлагаемого и известного способов. Из табл. 3 видно, что при использовании раствора аммоневой соли хлорной кислоты концентрации 20 мг/л с целью повышения воспроизводительной способности и жизнестойкости дафний (известный способ) за 30дн опыта прирост численности составляет 30 g к контролю, при использовании с той же целью раствора крезацина концентрации 20 мг/л прирост за 30 дн опыта составляет 265 /. При содержании крезацина в культуральной среде в количестве
200 мг/л (табл, 3, опыт 2) приросту численности к контролю увеличивается до 569 Д.
Сравнение результатов двух способов культивирования целесообразно проводит
5 также по таким продукционным параметрам, как биомасса и средняя скорость роста культуры, которые не приведены для известного способа. Поэтому сравнение полученных данных возможно только от10 носительна контрольного опыта, не содержащего крезацина, при прочих равных условиях. В опытах 1-3 (табл. 3) по предлагаемому способу культивирования дафний начальная биомасса рачков составляет
15 2,5 г/м . В результате культивирования дафэ ний в течение 30. сут в среде, содержащей .крезацин в количествах 20 и 200 мг/л (опыты
1 и 2, табл. 3), при полном изъятии культуры биомасса дафний выше контрольной вели20 чины соответственно в 4,7 и 8,9 раза.
Таким образом, предлагаемый способ культивирования дафний обеспечивает жизнестойкость, прирост массы особи, значительно увеличивает воспроизводитель25 ную способность дафний, что приводит к повышению выхода биомассы культуры.
Формула изобретения
Способ культивирования ракообразных
30 Daphnia .magna Sit, предусматривающий внесение культуры ракообразных в культуральную среду, последующее периодическое внесение кормовой сус пензии микроводорослей и добавление в среду хи35 мического соединения — стимулятора развития ракообразных, отличающийся тем, что, с целью повышения выхода биомассы ракообразных, в качестве химического соединения используют крезацин в концентра40 ции 20-200 мг/л, при этом внесение крезацина осуществляют через день.
1717032
Таблица 2
Влияние растворов креэацина на показатели янзмедеятельности давний
Опыт Текстируеная
) концентрация раствора крезацина> мг/л
Средняя плодовитость за
30 сут..я расчете ма
10 особей, вт
Выямваемость поколеним за 30 сут., Ф
Средняя масса особи за
30 сут., мг/особь
Первое Второе )Третье поколение поколение1поколение
Исходные особи
Отклонение от контроля, Ф
Отклонение т,а
И8м
37,33 д 1 85
24,672 4.33
44,33 t 7,75
159,67й 10.,27
298, O0 2 37, 0O
283,33 в 18 ° О
289,00 + 18 ° 5
-34,51
+18,75
+327,73
+698,29
+658,92
+674,18
Таблица 3
Тестируемая концентрация стимулятора
Способ
Прирост Биомасса за к кон- 30 сут опыта, тротвв,8 г/и
Число особей
Прирост к контроле, 2
Иерт вне особ» в конце опыта в накале е конце опыта опыта
Раствор аннониевой сопи хлорной кислоты концентрации 20 нг/л (0,0022) Известный I
400
678
522 . 504
Контроль
Раствор крезацина кон центрации 20 нг/л
ll
265
2536,8х
100 ° 8
84,48
Предлага- 1 еный
3,02 30,7
Раствор крезацина концентрации 200 нг/л
3,10 34,2
569
924
159,05
17.96
138
2,31
Контроль
Составитель А, Гзрбэлзу
Техред М.Моргентал Корректор M. Кучерявая
Редактор А. Огар
Заказ 823 Тираж Подписное
ВНИИПИ Государственного комитета по изобретениям и открытиям при ГКНТ СССР
113035, Москва, Ж 35, Раушская наб., 4/5
Производственно-издательский комбинат -"Патент", г, Ужгород, ул.Гагарина, 101
1 Контроль (вода)
2 0,2
3 2,0
4 20
5 200
6 500
7 1000
90,0
76,7
90,0
83,3
100,0
90,0
90,0
90,0
86,7
76,7
86,6
80,0
80,0
90,0
100,0
96,7
90 ° О
96 ° 7
83,3
86,7
80,0
100,0
95,0
83.3
96,7.
96 ° 7
86,7
90,0
2,3Т
2,09
2;.Зб
3,02
3,10
3,19
3,06
Ф0,2
0,14
+0,09
З0,12
20,11
+ 0,07
+ 0,18
-9,52
+2 ° 16
+30,7
+34,2
+38 ° I
+32,5
Средняя масса особи в конце опыта .
4774,02
+169,"
531,0-"
+46,0
Средмяя скорость роста куяьтуры, r/è, за
1 сут