Вектор реl25а, предназначенный для экспрессии чужеродного днк

Вектор реl25а, предназначенный для экспрессии чужеродного днк

Реферат

 

Изобретение относится к области биотехнологии, и в частности к генетической инженерии, и может быть использовано при создании плазмид и соответствующих штаммов-продуцентов рекомбинантных белков, а также для очистки белковых продуктов. Вектор pEL5а содержит оперон, состоящий из гена, кодирующего рекомбинантный белок, и гена лизоцима, одновременно с синтезом рекомбинантного белка идет синтез лизоцима, разрушающего полисахаридную оболочку E. coli, что существенно упрощает очистку водонерастворимых агломератов рекомбинантного белка. 1 ил.

Изобретение относится к области биотехнологии, генетической инженерии и может быть использовано для получения плазмид, синтезирующих рекомбинантные белки.

Большие количества рекомбинантных белков можно синтезировать в клетках Escherichia coli, несущих системы экспрессии рекомбинантных генов на основе промоторов фага лямбда (см. например, Н. Bernard and D. R. Helinski. Methods Enzymol. vol. 68, рр. 482-492, 1979). Транскрипция в таких системах регулируется связыванием температурочувствительного репрессора фага лямбда, кодируемого мутантным геном с Its857, с операторным участком. Когда клетки растут при температуре 30-32^oС, репрессор связывается с оператором и блокирует экспрессию. При повышении температуры роста до 42^oС репрессор инактивируется, что позволяет РНК-полимеразе связаться с промотором и начать транскрипцию гена. В результате интенсивной транскрипции и последующей трансляции могут синтезироваться значительные количества белка.

Известны рекомбинантные плазмидные ДНК рЕХ2 и рЕХ3, позволяющие экспрессировать рекомбинантные белки во всех трех рамках считывания (K. K. Stanley and J.P. Luzio. The EMBO Journal, vol.3, pp. 1429-1434, 1984). Последовательности ДНК для экспрессии можно вставить в полилинкер, расположенный в 3'-конце гена lacZ. В указанных плазмидах P_R промотор бактериофага лямбда обеспечивает экспрессию последовательностей ДНК, и продукт составляет значительную часть суммарного бактериального белка. Экспрессируемый белок в клетке накапливается в виде водонерастворимых агломератов.

Однако у этих векторов есть недостаток: для выделения водонерастворимых агломератов рекомбинантного белка необходимо разрушать клеточную стенку бактерии.

Вектор рЕХ1 выбран в качестве прототипа для получения вектора рЕL5a. Преимущество заявленного вектора рЕL5a заключается в том, что в результате использования оперона, состоящего из гена, кодирующего рекомбинантный белок, и гена лизоцима (фиг. 1), одновременно с синтезом рекомбинантного белка идет синтез лизоцима, разрушающего полисахаридную оболочку E.coli, что существенно упрощает очистку водонерастворимых агломератов рекомбинантного белка.

Сущность изобретения состоит в том, что сконструирован вектор рЕL5a размером 6,4 тысячи пар оснований (т.п.о.), состоящий из следующих элементов (фиг. 1): -Xbal-Xbal-фрагмента плазмидной ДНК бактериального вектора рЕХ1 размером 5,8 т. п.о. который содержит слитный cro-lacZ, ген кодирующий слитный белок под контролем промотора Р_R бактериофага лямбда, полилинкер в 3'-конце lacZ-гена; -BamH1-BamH1-фрагмента ДНК плазмиды pLysS (A.C.Y. Chang and S. N. Cohen. J. Bacteriol. vol.134, pp. 1114, 1978), содержащего ген лизоцима бактериофага Т4 и имеющего размер 0,6 т.п.о.

Для конструирования плазмиды рЕL5a ДНК плазмиды рЕХ1 гидролизуют рестриктазой Хbal и достраивают по два нуклеотида в липких концах с помощью ДНК-полимеразы PollK. Параллельно получают BamH1 рестрикт размером 0,6 т.п. о. из плазмиды рLysS (A.C.Y. Chang and S.N. Cohen. J. Bacteriol. vol. 134, pp. 1141, 1978), содержащий ген лизоцима бактериофага Т4 и имеющий два достроенных с помощью PollK нуклеотида в липких концах. Фрагмет рЕХ1 лигируют с фрагментом ДНК, содержащим ген лизоцима бактериофага Т4. Лигазной смесью трансформируют клетки Е.coli, содержащие в хромосоме температурочувствительный ген бактериофага лямбда с Its857, например клетки штамма PLT90. Трансформанты высевают на среду с ампициллином при 30^oС. Клоны, содержащие рекомбинантные плазмиды с геном лизоцима в нужной ориентации, отбирают с помощью анализа на способность к лизису после индукции синтеза белка. Экспрессию рекомбинантных белков индуцируют повышением температуры до 42^oС. В клонах, продуцирующих лизоцим, после индукции белкового синтеза и последующего добавления хлороформа происходит лизис клеток. Из отобранных клонов стандартными способами выделяют плазмиду рEL5a. Векторная ДНК стабильна при хранении в 10мМ трис, рН 8,0, 1 мМ ЭДТА при -20^o С.

Изобретение иллюстрируется следующими примерами.

Пример 1. Получение векторной плазмиды рEL5a с оперонной системой экспрессии и лизиса.

Клетки бактерий E.coli PLT90, содержащие плазмиду pEX1 (K.K. Stanley and J. P. Luzio. The ЕМВО Journal, vol. 3, pp. 1429-1434, 1984), выращивают в 50 мл бульона 2YT (16 г триптона, 10 г дрожжевого экстракта, 5 г NaCl на 1 л воды), содержащего 100 мкг/мл ампициллина до титра 10₉ кл/мл.

Клетки осаждают центрифугированием, ресуспендируют в 2 мл раствора (50 мМ глюкозы, 25 мМ трис-HCl, рН 8,0, 10 мМ ЭДТА, 5 мг/мл лизоцима) и инкубируют 5 мин при комнатной температуре. Далее добавляют 4 мл раствора 0,2 М NaOH, 1% додецилсульфата натрия, перемешивают, инкубируют 10 мин во льду, добавляют 3 мл охлажденного 5 М раствора ацетата калия, рН 4,8, перемешивают, оставляют на 10 мин во льду, образовавшийся осадок отделяют центрифугированием. К надосадочной жидкости добавляют 0,6 объема изопропилового спирта и выдерживают 15 мин при комнатной температуре. Осадок собирают центрифугированием, ресуспендируют в 0,5 мл ТЕ-буфера (10 мМ трис-HCl, pH 8,0, 1 мМ ЭДТА) и добавляют равный объем насыщенного раствора ацетата натрия. После инкубации в течение 30 мин при минус 20^oС осадок удаляют центрифугированием, а к надосадочной жидкости добавляют 0,6 объема изопропанола и оставляют на 1 час при комнатной температуре. Осадок собирают центрифугированием, промывают 70%-ным этанолом и ресуспендируют в 100 мкл ТЕ8-буфера.

Плазмидную ДНК (1 мкг рЕХ1) обрабатывают эндонуклеазой рестрикции Xba1 (10 ед.) в буфере А (50 мМ трис-HCl, рН 7,6, 10 мМ MgCl₂, 1 мМ дитиотрейтол, 100 мМ NaCl, 4 мМ спермидина) в течение 2 часов. Анализ полноты гидролиза проводят с помощью электрофореза. Используя фрагмент Кленова ДНК-полимеразы E. coli, достраивают два из четырех нуклеотидов в липких Xba1-концах. Белки удаляют фенольной экстракцией, ДНК осаждают этанолом и ресуспендируют в 5 мкл ТЕ8.

Для получения фрагмента ДНК с геном лизоцима проводят рестрикцию 10 мкг ДНК плазмиды pLysS (A. C. Y. Chang and S. N. Cohen. J. Bacteriol, vol.134, pp.1141, 1978) рестриктазой BamH1. С помощью фрагмента Кленова ДНК-полимеразы E. coli достраивают два из четырех нуклеотидов в липких BamH1-концах. Фрагмент -BamH1-BamH1- с частично достроенными липкими концами размером 0,6 т. п. о. выделяют с помощью электрофореза сорбцией на бумагу ДЕ81. Бумагу промывают, инкубируют 30 мин при 80^oС в буфере 2 М ацетата натрия, 50 мМ трис-НCL, рН 7,5, 10 мМ ЭДТА. ДНК, перешедшую в раствор, удаляют с бумаги центрифугированием, к раствору добавляют 2 объема этанола. После инкубации при -20^oС в течение 1 часа осадок собирают центрифугированием и растворяют в 5 мкл буфера ТЕ8.

0,5 мкг фрагмента ДНК вектора рЕХ1 смешивают с 0,2 мкг ДНК, содержащей ген лизоцима бактериофага Т4. Соединение фрагментов проводят с помощью 10 ед. ДНК-лигазы фага Т4 в буфере: 30 мМ трис-НCl, рН 7,2, 10 мМ хлористого магния, 2 мг/мл желатины, 1 мМ спермидина, 0,1%-меркаптоэтанола, 0,2 мМ АТФ при 20^oС в течение 2 часов.

Полученной смесью трансформируют клетки E.coli PLT90, содержащие clts857 репрессор. Для этого ночную культуру клеток разводят средой LB с 10 мМ MgSO₄ в соотношении 1:100 и растят с аэрацией до плотности А550=0,3 ОЕ. После 15 мин охлаждения при 0^oС клетки собирают центрифугированием, суспендируют в 1/3 первоначального объема буфером 30 мМ ацетата калия, рН 5,8, 100 мМ RbCL, 50 мМ MnCl₂, 15% глицерина, и оставляют на 30-60 мин на льду. Клетки собирают центрифугированием, ресуспендируют в 1/12,5 первоначального объема в буфере 10 мМ MOPS, рН 6,8, содержащем 10 мМ RbCl, 75 мМ СаCl₂, 15% глицерина и инкубируют 15 мин на льду. К суспензии клеток добавляют лигированные фрагменты ДНК, инкубируют 40 мин при 0^oC, затем 2 мин при 34^oС, 2-3 мин при 0^oС, разбавляют в 5 раз средой 2YT, растят 30 мин при 30^oС и высевают на агаризованную среду 2YT с ампициллином (50 мг/мл).

Клоны, содержащие рекомбинантные плазмиды с геном лизоцима в нужной ориентации, отбирают с помощью анализа на способность к лизису после индукции синтеза белка. Экспрессию рекомбинантных белков индуцируют повышением температуры до 42^oС. В клонах, продуцирующих лизоцим, после индукции белкового синтеза и последующего добавления хлороформа происходит лизис клеток. Из отобранных клонов стандартными способами выделяют плазмиду рЕL5а. Векторная ДНК стабильна при хранении в 10мМ трис, рН 8,0, 1 ЭДТА при -20^oС.

Пример 2. Использование вектора рЕL5а для получения рекомбинантных белков в виде водонерастворимых агломератов.

Клетки PLТ90, содержащие плазмиду pEL5а, инокулируют в 1 мл среды LB со 100 мкг/мл ампициллина и растят ночь при 30^oС. Ночную культуру разводят в 2 мл этой же среды в соотношении 1:100 и растят с аэрацией до 0,2 ОЕ при 550 нм, затем повышают температуру до 42^oС для индукции синтеза слитного белка и растят еще 2 часа. Затем добавляют хлороформ до 1% и инкубируют при 37^oС еще час. Далее лизат центрифугируют, ресуспендируют осадок в 75 мкл буфера ТЕ8 и добавляют равный объем буфера для электрофореза (160 мМ трис-HCl, рН 6,8, 20% глицерина, 4% додецилсульфата натрия, 4 мМ ЭДТА, 6%-меркаптоэтанола, 0,05% бромфенолового синего). Клеточные белки анализируются с помощью электрофореза в полиакриламидном геле по Лэммли (U.K. Lammli. Nature, vol.227, рр. 680-685, 1970). После окончания электрофореза белки в геле фиксируют и окрашивают кумасси ярко-голубым R-250.

Анализ полученных результатов показывает, что в результате действия лизоцима происходит разрушение оболочки бактерии и высвобождение водорастворимых клеточных белков в среду, что проявляется в ослаблении минорных белковых полос. В контроле, в случае использования плазмиды рЕХ1, такого эффекта нет.

Таким образом, изобретение позволяет получать водонерастворимые агломераты рекомбинантных белков без использования дополнительных методов разрушения клеточных стенок.

Формула изобретения

Вектор рЕL5а, предназначенный для экспрессии чужеродной ДНК, размером 6,4 т.п.о, содержащий: XbaI-XbaI фрагмент плазмидной ДНК бактериального вектора рЕХI размером 5,8 т.п.о. со слитным cro-LacZ геном, кодирующим белок под контролем промотора Р_R бактериофага лямбда и полилинкером в 3'-конце LacZ-гена; BamHI-BamHI фрагмент ДНК плазмиды pLys S с геном лизоцима бактериофага Т4 размером 0,6 т.п.о. уникальные сайты рестрикции для клонирования ДНК на 3'-конце гена LacZ, SmaI, BamHI, SalI, PstI; оператор O_R и промотор P_R бактериофага терминаторы транскрипции фага fd; генетический маркер устойчивость к ампициллину; спектр хозяев - бактерии Escherichia coli с геном clts 857 бактериофага лямбда.

РИСУНКИ

Рисунок 1