Способ получения диагностической сыворотки с агглютининами к вирулентным иерсиниям (сви)

Реферат

 

Изобретение относится к медицине и ветеринарии и может быть использовано для диагностики или профилактики иерсиниоза и псевдотуберкулеза. Сыворотку получают путем иммунизации кроликов, при этом антиген вводят внутривенно по схеме: 0,09-0,11 мл трехкратно с интервалом 2-3 дня и через 7-8 дней - еще 2 введения с интервалом 2-3 дня, а в качестве адсорбентов используют микробные массы референтных штаммов 189 ГИСК и 207 ГИСК. Полученная сыворотка позволяет при уменьшении трудоемкости способа более точно дифференцировать вирулентные штаммы возбудителя иерсиниоза и псевдотуберкулеза от невирулентных иерсиний и других энтеробактерий. 2 табл.

Изобретение относится к медицине и ветеринарии и может быть использовано для диагностики или профилактики иерсиниоза и псевдотуберкулеза путем дифференциации вирулентных культур энтеро-патогенных иерсиний от невирулентных и других бактерий.

Известно использование для дифференциации патогенных и непатогенных иерсиний определение их биохимического профиля (биовара) и/или О-серовара [1,2] . Вместе с тем известно, что возбудителями иерсиниоза является только часть представителей вида Yersinia enterocolilica, а именно патогенные варианты, содержащие в своих клетках плазмиду вирулентности pYV [2]. Гены данной плазмиды контролируют проявление многих патогенных свойств возбудителей иерсиниоза и псевдотуберкулеза, некоторые культуральные особенности и синтез ряда белков наружной мембраны при температуре тела хозяина (37oС). Выявление нуклеотидных последовательностей pYV или контролируемых ее генами белков используется для диагностики заболеваний, вызываемых энтеропатогенными иерсиниями.

Недостатком существующих способов дифференциации возбудителей иерсиниоза и псевдотуберкулеза от непатогенных иерсиний и других энтеробактерий является их трудоемкость и сложность получения тест-систем для них.

Наиболее близким к заявленному техническому решению по существу является способ получения диагностической сыворотки с антителами к вирулентным иерсиниям (Диагностическая сыворотка с антителами к вирулентным иерсиниям. Лабораторное дело, 1990, N10, с.66-68; авторы Смирнов И.В., Горохов В.И.) [3]. При этом сыворотку также получают путем гипериммунизации кроликов клетками вирулентных иерсиний с последующей адсорбцией перекрестно-реагирующих антител микробной суспензией. Недостатками указанного способа является сложность проведения иммунизации кроликов и недостаточная точность в работе, связанная с использованием нестандартных штаммов-адсорбентов сыворотки. Используемое субконъюнктивальное введение антигена придает способу трудоемкость, но замена его на обычное внутривенное введение фактически не влияет на сроки получения гипериммунной сыворотки и высоту титра ее специфических антител (табл.1).

Целью настоящего изобретения является упрощение способа получения гипериммунной диагностической сыворотки, которое достигается за счет изменения схемы иммунизации, а также повышение специфичности и чувствительности получаемой сыворотки, которое достигается за счет использования в качестве адсорбентов сыворотки референтных штаммов возбудителя иерсиниоза.

Поставленная цель достигается тем, что для иммунизации кроликов антиген вводят внутривенно по схеме: 0,09-0,11 мл троекратно с интервалом 2-3 дня и через 7-8 дней - еще 2 введения такого же количества антигена с интервалом 2-3 дня, а в качестве адсорбентов используют микробные массы референтных штаммов 189 ГИСК и 207 ГИСК.

Известно, что повышение специфичности адсорбированной диагностической сыворотки возможно при более полном совпадении антигенной структуры штамма-продуцента и штамма, используемого для адсорбции перекрестно-реагирующих антител, причем наибольшей специфичности следует ожидать от применения генетически связанных (изогенных) вариантов с известными характеристиками.

Был получен и всесторонне изучен изогенный вариант штамма-продуцента сыворотки - Yersinia enterocolitica серовара О3 биовара 4, утративший плазмиду вирулентности (pYV-). Показана его идентичность родительскому штамму 955 S по биологическим свойствам за исключением тех, которые контролируются плазмидой pYV (аутоагглютинабельность, кальцийзависимость, температурозависимая морфология колоний, вирулентные свойства, плазмид-ассоциированные антигены). В качестве штамма-адсорбента при получении иммунной сыворотки к белкам наружной мембраны иерсиний он был депонирован в национальной коллекции (N189 ГИСК). Аналогичным методом был охарактеризован бесплазмидный вариант референтного штамма Yersinia enterocolitica серовара О9 биовара 2 (КМ-33(201) в коллекции ВНИПЧИ "Микроб"), утративший плазмиду вирулентности (pYV-). В качестве штамма-адсорбента при получении иммунной сыворотки к белкам наружной мембраны иерсиний, а также в качестве тест-штамма для выявления и оценки свойств иерсиний, связанных с содержанием плазмиды вирулентности pYV, он также был депонирован в национальной коллекции (N207 ГИСК).

Оба штамма (NN 189 ГИСК и 207 ГИСК) на авторских правах хранятся в лиофилизированном виде в Государственном научно-исследовательском институте стандартизации и контроля медицинских биологических препаратов им. Л.А.Тарасевича (справки о депонировании 01-07/115 от 16.03.89 и 01-07/482 от 19.11.90 соответственно).

Для оценки эффективности применения штаммов ГИСК 189 и ГИСК 207 в качестве адсорбентов при получении сыворотки СВИ лиофильные культуры, полученные из музея, готовили и проверяли в соответствии с указаниями паспорта штамма. Чистые культуры штаммов выращивали при 35-37oС в течение 24-48 ч, трижды отмывали в физиологическом растворе натрия хлорида. Вначале адсорбцию проводили микробной массой штамма ГИСК 189. Для этого на 1 мл гипериммунной сыворотки добавляли 80-100 мг сырой отмытой массы адсорбента в 2-5 мл физиологического раствора хлорида натрия, тщательно перемешивали, оставляли суспензию в термостате при 35-37oС на 1-2 ч, после чего добавляли 40-50 мг сырой массы культуры ГИСК 207, вновь суспензировали, выдерживали при 35-37oС 1-2 ч, перемешивали и оставляли на 18-20 ч при 4-8oС.

После проведения адсорбции микробные клетки удаляли центрифугированием и фильтрованием через мембранные фильтры. Рабочие разведения сыворотки (1: 20-1: 50) готовили с использованием фенолизированного физиологического раствора хлорида натрия (конечная концентрация фенола 0,25%).

Результаты испытания СВИ, полученной предлагаемым способом, представлены в табл.2.

Таким образом, проведенные исследования показали, что при меньшей трудоемкости полученная сыворотка позволяет более точно дифференцировать вирулентные штаммы возбудителя иерсиниоза и псевдотуберкулеза от невирулентных иерсиний и других энтеробактерии.

Источники информации 1. Инструкция по эпидемиологии, организации и проведению противоэпидемических мероприятий и лабораторной диагностике псевдотуберкулеза и иерсиниоза // В. Н.Багрянцев, А.Б.Дайтер, Ф.Г.Дятлов и др. - М.: МЗ СССР, N15-6/42, утв.30.10.90, - 48 с.

2. Смирнов И.В., Ценева Г.Я. Фенотип возбудителя иерсиниоза и его значение для диагностики / Журн. микробиол. - 1992, - N1, - с.60-65.

3. Смирнов И.В., Горохов В.И. Диагностическая сыворотка с антителами к вирулентным иерсиниям / Лабораторное дело, 1990, N10, с.66-68 (прототип).

Формула изобретения

Способ получения диагностической сыворотки с агглютининами к вирулентным иерсиниям (СВИ) путем гипериммунизации кроликов плазмидосодержащим (pYV+) штаммом Yersinia enterocolitica серовара ОЗ и последующей адсорбции бесплазмидными (pYV-) вариантами иерсинии, отличающийся тем, что для иммунизации кроликов антиген вводят внутривенно по схеме: 0,09-0,11 мл трехкратно с интервалом 2-3 дня и через 7-8 дней - еще 2 введения с интервалом 2-3 дня, а в качестве адсорбентов используют микробные массы референтных штаммов ГИСК 189 и ГИСК 207.

РИСУНКИ

Рисунок 1, Рисунок 2