Способ моделирования гипоксической энцефалопатии
Изобретение относится к области медицины, а именно к экспериментальной медицине. Лабораторным животным однократно внутрибрюшинно или внутривенно вводят фенилгидразин в дозе 100-150 мг/кг. Способ позволяет более достоверно воспроизвести гипоксическую энцефалопатию. 1 з.п. ф-лы, 2 табл.
Реферат
Изобретение относится к области медицины, конкретно к экспериментальной медицине, и касается способа моделирования гипоксической энцефалопатии.
Известны способы моделирования гипоксической энцефалопатии, путем лигирования мозговых сосудов, временной остановки сердца, либо помещения животных в гермокамеру [1, 2], последний является наиболее близким по положительному эффекту способом моделирования гипоксической энцефалопатии - прототипом.
Однако данные способы весьма трудоемки, недостаточно воспроизводимы и зачастую не адекватны для изучения патогенеза заболеваний, связанных с гипоксией.
Задачей, решаемой данным изобретением, является упрощение способа, повышение степени воспроизводимости и расширение сферы применения модели гипоксической энцефалопатии.
Поставленная задача достигается тем, что лабораторным животным (мышам или крысам) однократно внутрибрюшинно либо внутривенно вводят в максимально переносимой дозе гемолитический яд, в качестве которого используют фенилгидразин в дозе 100-150 мг/кг.
Новым в предлагаемом изобретении является то, что для моделирования гипоксической энцефалопатии используют фенилгидразин в дозе 100-150 мг/кг.
Авторами не найдено в проанализированной литературе способа моделирования гипоксической энцефалопатии путем гемической гипоксии.
Сравнение предлагаемого изобретения с существующими способами моделирования энцефалопатии показало, что впервые предложено моделировать гипоксическую энцефалопатию с помощью введения животным максимально переносимой дозы гемолитического яда, в качестве которого используют фенилгидразин в дозе 100-150 мг/кг.
Фактор возможности получения желаемого результата с помощью введения животным максимально переносимой дозы гемолитического яда для специалиста не является очевидным. Эксперимент показал непредсказуемые результаты.
Таким образом, заявленное изобретение соответствует критериям изобретения “Новизна” и “Изобретательский уровень”, так как оно явным образом не следует для специалиста из уровня техники. Предлагаемое изобретение соответствует критерию “Промышленно применимо”, так как оно с успехом может использоваться в экспериментальной медицине (физиологии, патологической физиологии, фармакологии) для моделирования патологических состояний человека и животных.
Гипоксия, нарушая энергетический обмен, вызывает повреждение, в первую очередь структур ЦНС, определяемое спецификой метаболизма и функционирования нейронов. Основной особенностью последних, является сочетание высокого уровня метаболической активности, сопряженной с интенсивным потреблением кислорода и большой скоростью обновления фонда макроэргических веществ. Угнетение процессов аэробного окисления в тканях головного мозга при гипоксии существенно реорганизует центральную нервную систему, что создает предпосылки для изменения интегративно-пусковой деятельности нейронов и после воздействия, а в случае декомпенсации механизмов адаптации, запускает цепь патологических процессов, приводящих к прогрессирующим изменениям метаболических и функциональных показателей многих внутренних органов. С другой стороны, в постгипоксическом периоде, мозг сам становится объектом патогенных влияний органной патологии: системных нарушений гемодинамики, расстройств иммунного статуса, системы крови, гемостаза и т.д., что способствует усугублению повреждения центральной нервной системы.
Способ осуществляют следующим образом:
Животному однократно внутрибрюшинно либо внутривенно вводят в максимально переносимой дозе гемолитической яд, в качестве которого используют фенилгидразин в дозе 100-150 мг/кг.
Предлагаемый способ был изучен в экспериментах на мышах линии CBA/CaLac (животные 1 категории, конвенциональные линейные мыши) в количестве 80 штук, массой 18-20 г., и на 18-ти беспородных крысах. Животные получены из питомника отдела экспериментального биомедицинского моделирования НИИ фармакологии ТНЦ СО РАМН (сертификат имеется).
Пример 1.
Способ осуществляли следующим образом. Мышам линии СВА/ CaLac, массой 18-20 г., однократно внутрибрюшинно вводили фенилгидразин в дозе 150 мг/кг.
Пример 2.
Мышам линии СВА/ CaLac, массой 18-20 г., однократно внутривенно вводили фенилгидразин в дозе 100 мг/кг.
Пример 3.
Беспородным крысам, массой 250-300 г., однократно внутрибрюшинно вводили фенилгидразин в дозе 150 мг/кг.
Пример 4.
Беспородным крысам, массой 250-300 г., однократно внутривенно вводили фенилгидразин в дозе 100 мг/кг.
Гипоксическое воздействие моделировали путем однократного внутривенного введения фенилгидразина в дозе 100-150 мг/кг.
Оценку состояния центральной нервной системы животных производили по регистрации показателей психоневрологического статуса: условно-рефлекторной деятельности и ориентировочно-исследовательскому поведению животных в открытом поле.
Через 1 сутки после введения фенилгидразина во всех случаях у животных вырабатывался условный рефлекс пассивного избегания [3], проверка сохранности рефлекса осуществлялась на 7, 14, 21-е сут эксперимента. Регистрация показателей ориентировочно-исследовательского поведения в открытом поле производилась на 3, 7, 14-е и 21-е сут после воздействия [4].
Обработку результатов проводили методом вариационной статистики с использованием t-критерия Стьюдента и непараметрического U-критерия Вилкоксона-Манна-Уитни [5].
Результаты исследования.
В ходе эксперимента было показано, что внутрибрюшинное или внутривенное введение фенилгидразина в дозе 100-150 мг/кг приводило к достоверным изменениям двигательной активности животных в открытом поле и развитию выраженных нарушений мнестической функции центральной нервной системы мышей.
Так, изучение ориентировочно-исследовательского поведения после воздействия показало рост коэффициента асимметрии движений на 3, 7, 14, 21-е сут исследований, за счет увеличения количества горизонтальных перемещений животных на 7, 21-е сут, и падения числа обследований отверстий поля на 14-е сут опыта, а также уменьшение количества актов груминга на 3-е сут (табл. 1).
Кроме того, отмечались статистически значимое снижение уровня воспроизведения условного рефлекса пассивного избегания на 7, 14, 21-е сут исследования (до 0% на 21-е сут) и спонтанная гибель животных до 20% уже на 7-е сут эксперимента (табл. 2).
Таким образом, внутрибрюшинное или внутривенное введение фенилгидразина в дозе 100-150 мг/кг приводило к появлению признаков патологии центральной нервной системы, характерных для энцефалопатии.
Предлагаемый способ позволяет моделировать гипоксическую энцефалопатию путем введения экспериментальным животным в максимально переносимой дозе гемолитического яда, в качестве которого используют фенилгидразин в дозе 100-150 мг/кг, что позволило значительно упростить модель, повысить ее воспроизводимость и расширить сферу применения, в частности, использовать при гематологических исследованиях.
Литература
1. Методические рекомендации по скринигу и доклиническому испытанию антигипоксических средств./ Ю.Г.Бобков А.С.Лосев и др., М., 1989. - 20 с.
2. Суслов Н.И. Патогенетическое обоснование психофармакологических эффектов препаратов природного происхождения: Дис... докт. мед. наук. - Томск, 1995. - 406 с.
3. Буреш Я., Бурешова О., Хьюстон Дж. П.Методики и основные эксперименты по изучению мозга и поведения. / Пер. с англ. Под ред. проф. А.С.Батуева). - М.: Высшая школа, 1991. - 398 с.
4. Walsh R.N., Cummins R.A. The open-field test: a critical review. // Psychol. Bull. - 1976, V.83. - P. 482-504.
5. Лакин Г.Ф. Биометрия. - М.: Высшая школа, 1973. - 215с.
Таблица 1Динамика показателей ориентировочно-исследовательского поведения в открытом поле мышей линии CBA/CaLac при введении солянокислого фенилгидразина, в усл. ед., (Х±m) | ||||||||
Сроки исследования, сутки | Коэффициент асимметрии | Суммарная двигательная активность | Горизонтальная двигательная активность | Норковый рефлекс | Количество вертикальных стоик | Груминг | Дефекация | |
3-е | К | 0,47±0,03 | 22,0±4,28 | 10,44±2,22 | 8,44±2,01 | 1,56±0,5 | 1,0±0,44 | 0,56±0,18 |
ФГ | 0,6±0,04* | 20,22±1,43 | 12,11±1,17 | 6,67±0,83 | 0,89±0,26 | 0,0±0,0* | 0,56±0,18 | |
7-е | К | 0,39±0,04 | 22,8±3,77 | 9,3±1,96 | 10,0±1,72 | 1,9±0,6 | 0,9±0,29 | 0,7±0,15 |
ФГ | 0,66±0,03* | 30,38±5,72 | 19,75±3,77* | 7,75±1,82 | 2,0±0,94 | 0,25±0,16 | 0,63±0,18 | |
14-е | К | 0,4±0,03 | 17,2±1,87 | 7,1±1,03 | 7,1±1,21 | 0,9±0,28 | 1,4±0,43 | 0,7±0,21 |
ФГ | 0,58±0,08* | 12,38±2,53 | 7,75±2,02 | 2,5±0,98* | 0,63±0,26 | 1,0±0,27 | 0,5±0,19 | |
21-е | К | 0,43±0,03 | 21,9±2,78 | 9,6 ±1,55 | 10,0±1,41 | 1,1±0,38 | 0,4±0,16 | 0,8± 0,2 |
ФГ | 0,66±0,05* | 30,63±3,13 | 21,0±3,38* | 6,5±1,24 | 1,75±0,75 | 0,63±0,32 | 0,75±0,16 | |
К - соответствующие показатели у интактных животныхФГ - фенилгидразин* - отмечена достоверность различия показателя от его значения у интактных животных при р<0,05 |
Таблица 2Влияние введения солянокислого фенилгидразина на воспроизведение условно-рефлекторного навыка у мышей линии CBA/CaLac, (X±m) | ||||
Сроки исследования, сутки | Группа | Количество животных в группе | Уровень воспроизведения рефлекса1 | Доля погибших животных, в % |
7-е | Интактный контроль | 10 | 0,9±0,1 | 0 |
ФГ | 10 | 0,13±0,13* | 20 | |
14-е | Интактный контроль | 10 | 0,9±0,1 | 0 |
ФГ | 8 | 0,13±0,13* | 20 | |
21-е | Интактный контроль | 10 | 0,9±0,1 | 0 |
ФГ | 8 | 0,0±0,0* | 20 | |
1- доля животных с сохраненным рефлексомФГ - фенилгидразин* - отмечена достоверность различия показателя от его значения у интактных животных при р<0,05 |
1. Способ моделирования гипоксической энцефалопатии, заключающийся в введении экспериментальным животным фенилгидразина в дозе 100-150 мг/кг.
2. Способ по п.1, отличающийся тем, что фенилгидразин вводят однократно внутрибрюшинно или внутривенно.