Способ определения ацетилхолина
Изобретение относится к методам химического анализа биологических материалов и касается способа определения содержания ацетилхолина в биологических пробах, включающего инкубирование анализируемой пробы, центрифугирование, отбор супернатанта, приготовление щелочного гидроксиламинового реагента добавлением к раствору гидроксиламин хлорида в равном объеме 3,5 N раствора NaOH, смешивание полученного щелочного гидроксиламинового реагента с анализируемой пробой, добавление раствора соляной кислоты, окрашивание раствором хлорида железа с последующим измерением оптической плотности, где при приготовлении щелочного гидроксиламинового реагента перед добавлением 3,5 N раствора NaOH раствор гидроксиламин хлорида смешивают с 10-14% раствором Na2CO3, инкубирование анализируемой пробы проводят после смешивания ее с полученным щелочным гидроксиламиновым реагентом в течение 90-120 мин при температуре 33-37°С, при этом щелочной гидроксиламиновый реагент смешивают с анализируемой пробой в соотношении 2:1, перед центрифугированием добавляют раствор соляной кислоты и в отобранный супернатант приливают 0,74 М раствор хлорида железа. Технический результат - повышение точности определения ацетилхолина в биологических пробах, 2 табл.
Реферат
Изобретение относится к методам химического анализа биологических материалов и может быть применено при определении содержания ацетилхолина в биологических пробах.
Известен способ определения ацетилхолинэстеразы эритроцитов, принятый за аналог, заключающийся в том, что в цельную кровь добавляют кислую цитрат-декстрозу (1).
Известен способ определенна ацетилхолина, принятый за прототип, включающий разведение раствора гидроксиламии хлорида и добавление 3,5 N раствора NaOH, смешивание с анализируемой пробой и инкубирование, смешивание с соляной кислотой и окрашивание раствором хлорида железа с последующим измерением оптической плотности (2).
Однако способ-прототип имеет ограниченную точность определения ацетилхолина.
Целью изобретения является повышение точности определения содержания ацетилхолина в биологических пробах
Технический результат достигается тем, что при приготовлении щелочного гидроксиламинового реагента дополнительно используют 10-14% раствор Nа2СО3, а инкубирование осуществляют при температуре 33-37°С в течение 90-120 мин с последующим центрифугированием закисленного раствора.
Способ осуществляется следующим образом.
В раствор гидроксиламина хлорида (14%) добавляют 10-14% раствор Na2CО3 и смешивают в равных объемах с 3,5N раствором NaOH. Получают щелочной гидроксиламиновый реагент. Смешивают с анализируемой гомогенизированной пробой в соотношении 2:1. Инкубируют в термостате при температуре 33-37°С в течение 90-120 мин. Смешивают с соляной кислотой и центрифугируют при 3000-5000 об/мин в течение 8-12 мин. Отбирают супернатант и в равном количестве добавляют 0,74 М раствор хлорида железа. Оптическую плотность измеряют спектрофотометрически при длине волны 450-480 мкм. Параллельно проводят определение стандартных растворов ацетилхолина для построения калибровочной кривой.
Способ подтверждается следующими примерами.
Пример 1. Берут навеску слизистой оболочки тела желудка крысы, весом 50,0 мг, гомогенизируют в 1,0 мл дистиллированной воды, центрифугируют 15 минут при 5000 об/мин. Супернатант отбирают в объеме 0,5 мл 14% раствор гидроксиламин хлорида, дополнительно вводят 10% раствор Nа2СО3 и смешивают в равных объемах с 3,5N раствором NaOH, получая щелочной гидроксиламиновый реагент. Смешивают реагент с анализируемой пробой в соотношении 0,5 мл пробы и 1,0 мл щелочного гидроксиламинового реагента. Инкубируют в термостате при температуре 35°С в течение 120 мин. Смешивают с соляной кислотой 1,0 мл и центрифугируют при 5000 об/мин в течение 10 мин. Отбирают 0,5 мл супернатанта и добавляют 0,5 мл 0,74 М раствор хлорида железа. Оптическую плотность пробы измеряют спектрофотометрически при длине волны 480 мкм. Каждое определение проводят с определением стандартных растворов ацетилхолина 0,1; 0,2; 0,3; 0,4 мг/мл для построения калибровочной кривой для расчета содержания ацетилхолина в определяемой пробе.
Пример 2. Берут 1,0 мл желудочного сока человека. К 14%-ному раствору гидроксиламин хлорида добавляют 14% раствор Na2CO3 и смешивают в равных объемах с 3,5N раствором NaОН. Смешивают с анализируемой пробой и соотношении 1,0 мл пробы и 2,0 мл щелочного гидроксиламинового реагента. Инкубируют в термостате при температуре 33°С в течение 90 мин. Смешивают с 1,0 мл соляной кислоты и центрифугируют при 4000 об/мин в течение 8 мин. Отбирают 5 мл супернатанта и добавляют 0,5 мл 0,74 М раствора хлорида железа. Оптическую плотность измеряют спектрофотометрически при длине волны 450 мкм. Строят калибровочную кривую растворов ацетилхолина (0,1; 0,2; 0,3; 0,4 мг/мл) для расчета содержания ацетилхолина в определяемой пробе.
Пример 3. Берут 0,5 мл сыворотки крови человека. В 14% раствор гидроксиламина хлорида добавляют 12% раствор Na2CO3 и смешивают в равных объемах с 3,5N раствором NaOH. Получают щелочной гидроксиламиновый реагент. Смешивают с анализируемой пробой в соотношении 0,5 мл пробы и 1,0 мл щелочного гидроксиламинового реагента. Инкубируют в термостате при температуре 37°С в течение 100 мин. Смешивают с соляной кислотой и центрифугируют при 3000 об/мин в течение 12 мин. Отбирают 0,3 мл супернатанта и добавляют 0,3 мл 0,74 М раствор хлорида железа. Оптическую плотность измеряют спектрофотометрически при длине волны 470 мкм. Каждое определение проводилось с учетом калибровочной кривой стандартных растворов ацетилхолина (0,1; 02; 0,3; 0,4 мг/мл). Рассчитывают содержание ацетилхолина в определяемой пробе.
Воспроизводимость способа поясняется таблицей 1.
Таблица 1 | |||
Номер пробы | Номер измерения | Измерения | M±m |
1 | 1 | 0,480 | 0,478±0,003 |
2 | 0,473 | ||
3 | 0,480 | ||
2 | 1 | 0,475 | 0,475±0,003 |
2 | 0,480 | ||
3 | 0,470 | ||
3 | 1 | 0,484 | 0,482±0.002 |
2 | 0,480 | ||
3 | 0,481 | ||
4 | 1 | 0,482 | 0,479±0,002 |
2 | 0,476 | ||
3 | 0,478 | ||
5 | 1 | 0,484 | 0,482±0,001 |
2 | 0,480 | ||
3 | 0,482 |
Как видно из таблицы 1, количественные показатели содержания ацетилхолина в 5 сравниваемых пробах достоверно не различаются, что доказывает высокую воспроизводимость способа.
Сравнение точности определения содержания ацетилхолина при применении заявляемого и известного способов приведено в таблице 2.
Таблица 2 | ||
Номер пробы | Предлагаемый способ | Известный способ |
1 | 0,480 | 0,390 |
2 | 0,482 | 0,278 |
3 | 0,484 | 0,400 |
4 | 0,476 | 0,420 |
5 | 0,481 | 0,370 |
6 | 0,478 | 0,345 |
7 | 0,485 | 0,420 |
8 | 0,479 | 0,340 |
9 | 0,481 | 0,400 |
10 | 0,480 | 0,365 |
M±m | 0,481±0,002 | 0,373±0,024 |
Из таблицы 2 следует, что точность определения ацетилхолина заявляемым способом по сравнению со способом-прототипом выше на 29%.
Источники информации
1. Винницкая К.Б., Кузнецов В.А. Лабораторное дело, 1985, №7, 396-400.
2. Камышников В.С. Справочник по клинико-биохимической лабораторной диагностике, стр.472-474.
Способ определения ацетилхолина, включающий инкубирование анализируемой пробы, центрифугирование, отбор супернатанта, приготовление щелочного гидроксиламинового реагента добавлением к раствору гидроксиламин хлорида в равном объеме 3,5 N раствора NaOH, смешивание полученного щелочного гидроксиламинового реагента с анализируемой пробой, добавление раствора соляной кислоты, окрашивание раствором хлорида железа с последующим измерением оптической плотности, отличающийся тем, что при приготовлении щелочного гидроксиламинового реагента перед добавлением 3,5 N раствора NaOH раствор гидроксиламин хлорида смешивают с 10-14%-ным раствором Nа2СО3, инкубирование анализируемой пробы проводят после смешивания ее с полученным щелочным гидроксиламиновым реагентом в течение 90-120 мин при температуре 33-37°С, при этом щелочной гидроксиламиновый реагент смешивают с анализируемой пробой в соотношении 2:1, перед центрифугированием добавляют раствор соляной кислоты и в отобранный супернатант приливают 0,74 М раствор хлорида железа.