Способ получения диагностикума для выявления общего эндотоксина грамотрицательных бактерий
Изобретение относится к медицине, ветеринарии и пищевой промышленности. Предложен способ получения диагностикума для определения общего эндотоксина грамотрицательных бактерий. Способ включает получение латекса типа ядро-оболочка, где ядро - полистирольный латекс, а оболочка - латекс сополимера стирола и метакрилата цинка при массовом соотношении звеньев 1:0,8-1:0,4, сенсибилизацию латекса моноклональными антителами фракции IgG2a и IgG2b в 0,01 М глициновом буфере при рН 8,2-8,6 без предварительной выдержки и инкубацию сначала при 36-38°С в течение 120-180 мин, а затем при 2-8°С в течение 1-20 ч. Предложенный способ позволяет сократить время получения диагностикума, при этом полученный диагностикум обладает специфичностью 99±0,89 при чувствительности до 10 пг/мл, а время получения результата исследования составляет не более 10 мин. 6 табл.
Реферат
Изобретение относится к медицине, ветеринарии и пищевой промышленности.
Известен способ получения диагностикума для определения антигенов вируса гепатита В, согласно которому латекс сополимера стирола и метакрилат цинка сенсибилизируют антителами в 0,1М глициновом буфере, рН которого 7,0, а затем осуществляют инкубацию при 37°С в течение 2-8 ч (Чайка Н.А., Горбачев Е.Н. Применение реакции агглютинации сенсибилизированного латекса для диагностики вирусных инфекций. Вопросы вирусологии, 1985, №5, с.516-523).
Данный способ позволяет достаточно быстро получить диагностикум, выявляющий вирус гепатита В при концентрации 1 мкг/мл. К недостаткам диагностикума относятся: невысокая чувствительность, специфичность - 68,02±0,88 и длительное время получения результата - 20 мин.
Наиболее близким к предлагаемому способу является способ получения диагностикума для определения эндотоксинов грамотрицательных бактерий с использованием антительного диагностикума (US 5316911 A1, 31.05.1994).
Технической задачей изобретения является сокращение времени получения диагностикума для определения эндотоксина при высоких значениях чувствительности, специфичности и сокращения времени получения результата при его применении.
Техническая задача изобретения решается при получении диагностикума для определения эндотоксина, причем вначале получают латекс типа ядро-оболочка. Например, реактор продувают 30 мин азотом, загружают: 10% стирола, 0,1% персульфата калия, 89,9% воды, термостатируют, перемешивая при 70°С 7 ч до полной конверсии мономера. В полученный латекс вводят 0,2% стирола, 0,1% метакрилата цинка и 0,05% персульфата калия. Латекс перемешивают до растворения всех компонентов и затем термостатируют при 70°С 2 ч.
Частицы полученного латекса состоят из двух частей: внутреннее ядро - полистирол, наружная оболочка (0,2-20% от массы всей частицы) - статический сополимер стирола и метакрилата цинка в массовом соотношении 1:0,8-1:0,4. Массовое соотношение между звеньями метакрилата цинка и стирола, входящего как в ядро, так и в оболочку, составляет 1-12:100.
Далее проводят сенсибилизацию латекса моноклональными антителами фракции IgG2а и IgG2b фирм «Biogenesis» UK и «Chemicon», USA, и др. в 0,01 М глициновом буфере, рН которого 8,2-8,6, до полного связывания, при отсутствии предварительной выдержки латекса в буфере, с последующей инкубацией сначала при 36-38°С в течение 120-180 мин, а затем при 2-8°С в течение 1-20 ч.
Сокращение времени получения диагностикума достигнуто за счет выбора параметров сенсибилизации и инкубации без предварительной выдержки латекса в буфере.
На получение диагностикума с высокой чувствительностью и специфичностью влияют: рН буферного раствора, в котором осуществляют сенсибилизацию, начальная температура инкубации, начальное время инкубации, температура завершения инкубации, время завершения инкубации. В таблице 1 приведены данные зависимости чувствительности диагностикумов от величины рН глицинового буфера при начальной температуре инкубации 37°С в течение 150 мин, а затем 5°С в течение 10 ч.
Таблица 1 | |||
№ | Количество исследований | рН глицинового буфера | Чувствительность диагностикумов (микробные тела/мл) |
1 | 105 | 8,0 | 10000 |
2 | 105 | 8,2 | 5000 |
3 | 105 | 8,4 | 2500 |
4 | 105 | 8,6 | 4000 |
5 | 105 | 8,8 | 10000 |
В таблице 2 приведены данные зависимости чувствительности диагностикумов от начальной температуры инкубации при рН буфера, равном 8,4, начальном времени инкубации, равном 150 мин, а затем 5°С в течение 10 ч.
Таблица 2 | |||
№ | Количество исследований | Начальная температура инкубации | Чувствительность диагностикумов (микробные тела / мл ) |
1 | 105 | 35,5°С | 75000 |
2 | 105 | 36°С | 50000 |
3 | 105 | 37°С | 5000 |
4 | 105 | 38°С | 1000 |
5 | 105 | 38,5°С | 50000 |
В таблице 3 приведены данные зависимости чувствительности диагностикумов от начального времени инкубации при рН буфера, равном 8,4, начальной температуре инкубации, равной 37°С, и температуре завершения инкубации, равной 5°С, в течение 10 ч.
Таблица 3 | |||
№ | Количество исследований | Начальное время инкубации (мин) | Чувствительность диагностикумов (микробные тела/мл) |
1 | 105 | 90 | 5000 |
2 | 105 | 120 | 1000 |
3 | 105 | 150 | 1000 |
4 | 105 | 180 | 1000 |
5 | 105 | 210 | 25000 |
В таблице 4 приведены данные зависимости чувствительности диагностикумов от температуры завершения инкубации при рН буфера, равном 8,4, начальной температуре инкубации, равной 37°С, начальном времени инкубации, равном 150 мин, и времени завершения инкубации, равном 10 ч.
Таблица 4 | |||
№ | Количество исследований | Температура завершения инкубации | Чувствительность диагностикумов (микробные тела/мл) |
1 | 105 | 1°C | 75000 |
2 | 105 | 2°С | 50000 |
3 | 105 | 5°С | 10000 |
4 | 105 | 8°С | 1000 |
5 | 105 | 10°С | 50000 |
В таблице 5 приведены данные зависимости чувствительности диагностикумов от времени завершения инкубации при рН буфера, равном 8,4, начальной температуре инкубации, равной 37°С, начальном времени инкубации, равном 150 мин, и температуре завершения инкубации, равной 5°С.
Таблица 5 | |||
№ | Количество исследований | Время завершения инкубации (ч) | Чувствительность диагностикумов (микробные тела/мл) |
1 | 105 | 1 | 25000 |
2 | 105 | 5 | 10000 |
3 | 105 | 10 | 5000 |
4 | 105 | 15 | 10000 |
5 | 105 | 20 | 20000 |
Специфичность и чувствительность полученных диагностикумов для определения эндотоксина грамотрицательных бактерий проверяли в реакции агглютинации латекса с сыворотками крови доноров, больных сердечно-сосудистыми заболеваниями, больных гнойно-воспалительными заболеваниями. Учет результата реакции проводился по степени активированных частиц:
1. Максимальная степень - крупные хлопья на прозрачном фоне - 4 степень активированных частиц (4СА) (положительный результат).
2. Средняя степень - хлопья или крупные зерна на слегка мутном фоне - 3 степень активированных частиц (3СА) (положительный результат).
3. Минимальная степень - много зерен на мутном фоне - 2 степень активированных частиц (2СА) (положительный результат),
4. Контроль - абсолютно мутный фон или единичные зерна - 1 степень активированных частиц (1СА) (отрицательный результат).
В таблице 6 приведены результаты исследований.
Таблица 6 | ||
Исследуемая сыворотка | Количество исследований | Результат |
Доноры (не содержащие эндотоксина) | 115 | 100% - отр. |
Больные сердечно-сосудистыми заболеваниями (подтвержденные бактериологическими посевами) | 140 | 99% - полож., 1% - отр. |
Больные гнойно-воспалительными заболеваниями | 27 | 98% - полож., 2%-отр. |
Специфичность полученного диагностикума для выявления эндотоксина составляет 99±0,89 при чувствительности 10 пг/мл, при этом время получения результата исследования не более 10 мин. Время получения диагностикума для определения эндотоксина сокращено с нескольких месяцев до нескольких часов.
Способ получения диагностикума для определения эндотоксина грамотрицательных бактерий с использованием антительного диагностикума на латексном носителе, отличающийся тем, что в качестве носителя используют латекс типа ядро-оболочка, где ядро - полистирольный латекс, а оболочка - латекс сополимера стирола и метакрилата цинка при массовом соотношении звеньев 1:0,8-1:0,4, который сенсибилизируют моноклональными антителами в 0,01 М глициновом буфере при рН 8,2-8,6 до полного связывания, без предварительной выдержки латекса, а затем инкубируют сначала при 36-38°С в течение 120-180 мин, а затем при 2-8°С в течение 1-20 ч.