Способ повышения устойчивости птицы к воздействию возбудителя пуллороза
Изобретение относится к птицеводству. Способ включает предынкубационную обработку яиц светом гелий-неонового лазера ЛГН-104, длиной волны 632,8 нм, плотностью мощности 50 мВт/см2·с, в экспозиции 3 мин. Дополнительно яйца перед закладкой для инкубации зародышей на 6, 12, 18 дни и выведенных суточных цыплят обогревают светом газоразрядной лампы ДНЕСГ-500 длиной волны 630-650 нм, единовременно дезинфицируют со всех сторон тремя бактерицидными лампами БУВ-30 длиной волны 254/400 нм, номинальной мощностью 30 Вт, затем последовательно воздействуют излучением гелий-неонового лазера ЛГН-104, ртутно-кварцевой лампы ДРТ-400 и двух бактерицидных ламп БУВ-15 в экспозициях по 3 мин. Способ позволяет повысить устойчивость птиц к пуллорозу. 2 табл.
Реферат
Изобретение относится к птицеводству и может быть, применено для повышения устойчивости птицы к воздействию возбудителя пуллороза - Salmonella pullorum в производственных условиях.
Известен способ повышения жизнеспособности цыплят путем предынкубационной обработки яиц излучением четырех гелий-неоновых лазеров ОКГ-12 длиной волны 632,8 нм, выходной мощностью 15 мВт/см2, при котором стимулируется рост, развитие, показатели естественной резистентности потомства. (Петров Е.Б. Применение лучей гелий-неонового лазера для стимуляции эмбриогенеза кур и повышения жизнеспособности цыплят - Автореф. дисс... канд. с.-х. наук. М.: МВА - 1982 - 20 с.
Известен способ профилактики пуллороза птиц путем предынкубационной обработки яиц излучением гелий-неонового лазера ЛГН-104, длиной волны 632,8 нм, плотностью мощности на поверхности яиц 50 мВт/см2·с /Мамукаев М.Н. Патент №2193843, 2002 г., прототип/.
Недостатками известных способов является то, что не выявляют специфическую устойчивость птицы к пуллорозу при комплексной предынкубационной и инкубационной обработке яиц и суточных цыплят излучением гелий-неонового лазера ЛГН-104, газоразрядной лампы ДНЕСГ-500, ультрафиолета лампы ДРТ-400, БУВ-30 и БУВ-15, не определена бактерицидная активность сыворотки крови птицы, полученной из облученных яиц, относительно возбудителя пуллороза - Salmonella pullorum, не проведены микробиологические и серологические исследования бройлеров в постнатальном онтогенезе при облучении развивающихся эмбрионов на 6, 12, 18 дни инкубации и суточных цыплят.
Цель изобретения - повышение устойчивости птицы к воздействию возбудителя пуллороза - S.pullorum в условиях неблагополучного птицехозяйства.
Эта цель достигается тем, что куриные эмбрионы перед инкубацией зародышей на 6, 12, 18 дни развития и суточных цыплят обогревали светом газоразрядной лампы ДНЕСГ-500 длиной волны 630-650 нм, средней дозой 23,1 эрг, единовременно дезинфицировали со всех сторон тремя бактерицидными лампами БУВ-30 длиной волны 254/800 нм, номинальной мощностью 30 Вт, затем последовательно обрабатывали излучением гелий-неонового лазера ЛГН-104 длиной волны 632,8 нм, плотностью мощности оптического потока 50 мВт/см2·с, ртутно-кварцевой лампой ДРТ-400 длиной волны 400/185 нм, средней дозой 20 мэр/ч и двух бактерицидных ламп БУВ-15 длиной волны 254/800 нм, номинальной мощностью 15 Вт в экспозициях по 3 мин.
Анализ результатов исследования обработки яиц, развивающихся зародышей и суточных цыплят световой энергией на бактерицидную активность сыворотки крови подопытных цыплят-бройлеров показал, что светолазерная обработка в значительной мере способствует повышению бактерицидной и бактериостатической активности сыворотки крови относительно возбудителя пуллороза Salmonella pullorum (табл.1).
На 0,75 ч реакции сыворотки крови суточных бройлеров и S.Pullorum относительно результатов контрольной группы %-лизиса во 2-ой группе был достаточно выше на 2,09%-лизиса, в 3 - на 0,50, в 4 - на 1,60, в 5 - на 2,75 и в 6 группе - на 2,96%-лизиса, соответственно через 8 ч, реакции на 2,58; 0,78; 2,52; 3,45 и 4,44%-лизиса 16 ч - на 2,27; 0,93; 2,10; 3,13 и 3,58%-лизиса и через 24 ч реакции - на 2,30; 1,20; 0,80; 3,09 и 3,49%-лизиса, различия контроля и 4 группы птицы на 24 ч реакции были недостоверны (Р>0,05).
Таким образом, результаты исследований бактерицидной активности сыворотки крови подопытных цыплят относительно S.pullorum показывают, что стабильное повышение этих показателей наблюдается в группах применения лазерных, красных и ультрафиолетовых лучей в комплексе, а также при применении лазерных лучей. В группах ультрафиолета после 16 ч инкубирования ингредиентов наблюдается быстрый спад бактерицидной активности сыворотки крови, который достигает уровня контроля.
В результатах просматривается закономерное повышение бактерицидной активности сыворотки крови до 8 ч инкубирования и снижение результатов после 8 ч, достигая минимальных различий с контролем. Исключение составляет группа комплексного облучения яиц, где результаты выше, и в конце экспериментов.
У месячных бройлеров активность сыворотки крови во всех опытных группах была выше, чем в контроле. Исключение составляет 4 группа, где разница с контрольной группой на 24 ч исследований была минимальной и составила 0,55%-лизиса при Р>0,05.
Таблица 1.Бактерицидная и бактериостатическая активность сыворотки крови бройлеров относительно S.Pullorum, (X±MX), %-лизиса, n=10 | ||||||||
Возраст птицы, дней | ||||||||
Группа | 1 | 30 | ||||||
Время реакции, ч | ||||||||
0,75 | 8 | 16 | 24 | 0,75 | 8 | 16 | 24 | |
1 - контр. | 4,73±0,18 | 6,16±0,24 | 5,11±0,22 | 1,09±0,18 | 4,87±6,24 | 6,18±0,13 | 4,13±0,30 | 2,12±0,19 |
2 - опытн. (ЛГН-104) | 6,82±0,19 | 8,73±0,21 | 7,38±0,21 | 3,39±0,19 | 6,71±0,19 | 8,94±0,21 | 6,55±0,22 | - |
3 - опытная (ДНЕСГ-500) | 5,23±0,14 | 6,94±0,19 | 6,04±0,21 | 2,29±0,20 | 5,49±0,20 | 7,73±0,21 | 5,18±0,20 | 3,11±0,24 |
4 - -"- (ДРТ-400) | 6,33±0,20 | 8,68±0,23 | 7,21±0,14 | 1,89±0,18 | 6,85±0,20 | 8,91±0,24 | 6,11±024 | 2,67±0,22 |
5 - -"- (ЛГН, ДНЕСГ, ДРТ, БУВ-15) | 7,48±0,15 | 9,61±0,23 | 8,24±0,20 | 4,00±0,27 | 7,41±0,23 | 9,77±0,20 | 7,09±0,31 | 5,34±0,20 |
6 - опытная (ЛГН, ДНЕСГ, ДРТ, БУВ-15, БУВ-30 | 7,69±0,17 | 10,60±0,22 | 8,69±0,20 | 4,58±0,21 | 8,34±0,21 | 9,98±0,19 | 8,13±0,24 | 6,17±0,18 |
Обобщая результаты исследований следует отметить, что определение бактерицидной и бактериостатической активности сыворотки крови относительно S.pullorum можно рекомендовать как тест для определения резистентности птицы при пуллорозе - тиф. Наши исследования свидетельствуют о более высокой степени устойчивости организма птицы, полученного из яиц зародышей и суточных цыплят после световой обработки. Наиболее высокие результаты были зарегистрированы в группе молодняка, полученного из яиц, зародышей и суточных цыплят после комплексной обработки и дезинфекции лазерным, красным и ультрафиолетовым светом. При сравнении применения лазерного и ультрафиолетового света, до 16 ч инкубирования достоверно отличимых результатов не обнаружено, однако после 16 ч в группе ультрафиолета активность сыворотки крови снижается более резко и у суточных цыплят достигает величин контроля. Относительно группы применения монохроматического красного света лазерный свет более активен в стимуляции бактериостатических и бактерицидных свойств сыворотки крови.
Таблица 2.Микробиологические и серологические исследования месячных бройлеров при светолазерной активизации, n=200 | |||||||
Группа | Источники света | Объект обработки | Сохранено, гол. | Пало, гол. | Выделено S.pullorum проб | Реагировало положительно по PA, проб | Имели контакт с s.pullorum, гол |
1 - контрольная | - | - | 189 | 11 | 5 | 25 | 30 |
2 - опытная | эмбрионы | 196 | 4 | 3 | 25 | 29 | |
3 - опытная | -"- | 194 | 6 | 3 | 27 | 30 | |
4 - опытная | -"- | 194 | 6 | 2 | 25 | 27 | |
5 - опытная | ЛГН-104 | -"- | 197 | 3 | 1 | 23 | 24 |
ДНЕСТ-500 | |||||||
ДРГ-400 | |||||||
БУВ-15 | |||||||
6 - опытная | ЛГН-104 | эмбрионы, | 198 | 2 | - | 21 | 23 |
ДНЕСТ-500 | суточные | ||||||
ДРТ-400 | цыплята | ||||||
БУВ-15 | |||||||
БУВ-30 |
Результаты сохранности, микробиологических и серологических исследований месячных бройлеров отражены в таблице 2.
Сохранность подопытных бройлеров была наивысшей в 6 группе и составила 99%, в то же время как во 2 группе она была равна 98%, в 3 и 4 группах 97% и в 5 группе 98,5%, что выше показателя контроля (94,5%) на 4,5%; 3,5%; 2,5% и 4% соответственно.
Микробиологическими исследованиями установлено, что из пат. материала 11 павших цыплят контрольной группы выделено возбудителя пуллороза S.pullorum в 5, соответственно во 2 группе 4 и 3, в 3 - 6 и 3, в 4 - 6 и 2, в 5 - 3 и в 6 группе из 2 павших цыплят не выделено возбудителя пуллороза.
При серологических исследованиях по реакции агглютинации положительно реагировало на пуллорозный антиген в 1 группе 25 проб, во 2 - 26, в 3 - 27, в 4 - 25, в 5 - 23 и в 6 группе - 21 проба.
Установлено, что из 200 бройлеров в группах имели контакт с возбудителем пуллороза в 1, 2, 3, 4, 5 и 6 группах соответственно 30, 29, 30, 27, 24 и 23 бройлера, из которых по причине пуллороза пало в 1 группе - 16,7%, во 2 - 10,3%, в 3 - 10,0%, в 4 - 7,4%, в 5 - 4,2%, а в 6 группе отхода по причине пуллороза не отмечено.
Таким образом, показатели общей жизнеспособности, выживаемости птицы в условиях неблагополучного по пуллорозу хозяйства, бактерицидной и бактериостатической активности сыворотки крови относительно возбудителя пуллороза S.pullorum, серологических и микробиологических исследований показывают, что использование предлагаемого способа обогрева яиц, зародышей на 6, 12, 18 дни и суточных цыплят светом газоразрядной лампы, единовременная дезинфекция со всех сторон бактерицидными лампами БУВ-30 и обработка излучениями лазера ЛГН-104, ламп ДРТ-400 и БУВ-15 в экспозициях по 3 минуты повышает устойчивость птицы к воздействию возбудителя пуллороза - тифа птиц Salmonella pullorum.
Способ повышения устойчивости птицы к воздействию возбудителя пуллороза, включающий предынкубационную обработку яиц светом гелий-неонового лазера ЛГН-104, длиной волны 632,8 нм, плотностью мощности на поверхности яиц 50 мВт/см2·с, с экспозицией 3 мин, отличающийся тем, что яйца перед закладкой для инкубации зародышей на 6-й, 12-й, 18-й дни развития и выведенных суточных цыплят обогревают светом газоразрядной лампы ДНЕСГ-500 длиной волны 630-650 нм, средней дозой 23,1 эрг, единовременно дезинфицируют со всех сторон тремя бактерицидными лампами БУВ-30 длиной волны 254/800 нм, номинальной мощностью 30 Вт, затем последовательно обрабатывают излучением гелий-неонового лазера ЛГН-104 длиной волны 632,8 нм, плотностью мощности на поверхности яиц 50 мВт/см2·с, ртутно-кварцевой лампы ДРТ-400 длиной волны 400/185 нм, средней дозой 20 мэр/ч и двух бактерицидных ламп БУВ-15 длиной волны 254/400 нм, номинальной мощностью 15 Вт с экспозицией по 3 мин.