Способ взятия крови у лабораторных мышей
Изобретение относится к физиологии, а именно к методам взятия крови при изучении влияния белковых препаратов на показатели естественной резистентности. Сущность способа заключается в том, что кровь у мышей собирают при помощи декапитации головы животных, предварительно помещенных в термостат на 2-5 минут при температуре 40-42°С. Использование изобретения позволяет упростить взятие крови у белых мышей и увеличить количественные показатели собираемой крови и сыворотки. 4 табл.
Реферат
Изобретение относится к физиологии, а именно к взятию крови с последующим отделением сыворотки при изучении влияния белковых препаратов на показатели естественной резистентности.
Известен способ получения крови лабораторных животных с помощью декапитации, описанный в SU №1296117 А1 «Устройство для забора крови у мелких лабораторных животных», опубликованный 15.03.1987.
Недостатки данного способа заключаются в малых количествах собираемой крови, недостаточных для исследования физиологических показателях крови при влиянии белковых препаратов на организм животного.
Упрощение способа взятия крови у белых мышей и увеличение количественных и качественных показателей собираемой крови и сыворотки достигается тем, что кровь берут у белых мышей: контрольных и опытных (иммунизированных препаратом из костного мозга, белковой природы). Для этого отбирают здоровых животных, находящихся в одной весовой и возрастной категориях и в одном физиологическом состоянии. Формируют группы из контрольных и опытных животных. Животных помещают в одинаковые условия после иммунизации опытных и следят за их физиологическим состоянием до появления первого иммунного ответа на введенный антиген. Препарат для введения в заднюю подушечку мыши получают из костного мозга трубчатых костей диких и сельскохозяйственных животных путем осаждения белков из клеток костного мозга с помощью 10% раствора трихлоруксусной кислоты и последующего диализа белкового раствора.
Взятие крови у мышей обеих групп проводят декапитацией головы животного. Животных предварительно выдерживают в термостате в течение 2-5 минут при температуре 40-42°С (происходит повышение обмена веществ и разжижение крови мышей). Затем животное с помощью пинцета хватают за складку кожи на загривке, фиксируют и отсекают голову стерильными ножницами. Кровь собирают с помощью воронки в тонкие пробирки Уленгута до тех пор, пока происходят предсмертные судорожные конвульсии тела животных, и кровь порциями выбрасывается в воронку.
Кровь после взятия 25-30 мин выдерживают в термостате (35...37°С), затем сгусток ее обводят тонкой металлической палочкой (отделение сгустка от стенок сосуда) и ставят на 16-18 часов в холодильник. Сыворотку отсасывают пипеткой с помощью груши, переносят в стерильный сосуд, закрывают крышкой и хранят в холодильнике. Таким образом, можно получить до 1,5...2 мл крови и ≈0,5 мл сыворотки.
Пример 1.
Беспородных белых мышей, самцов в одной возрастной категории (4-6 месяцев) массой 18,8±0,3 г иммунизируют препаратом из костного мозга лисиц, содержащим 50,3 г/л общего белка в своем составе (таблица 1), в подушечку задней левой лапки в дозе 0,025 мл на мышь. Через 7-8 дней от животных опытных и контрольных групп собирают кровь для исследования сыворотки на общий белок и его фракции. Проводят декапитацию головы животных, не помещая их предварительно в термостат. Собирают кровь и отделяют сыворотку как описано выше. Таким образом, получают до 0,5±0,04 мл крови.
Таблица 1Электрофорез костного мозга лисиц в геле агарозы по методике Чекишева В.М. (1977) | |||||||||
Проба | Общий белок (г/л) | Альбумины (г/л) | Глобулины (г/л) | γ1+γ2 | %∑γ1+γ2 | ||||
α1 | α2 | β | γ1 | γ2 | |||||
1 | 50,3 | 6,18 | 7,06 | 10,59 | 11,47 | 11,47 | 3,53 | 15,00 | 29,82 |
2 | 50,3 | 6,29 | 7,19 | 10,78 | 10,78 | 10,78 | 4,48 | 15,26 | 30,33 |
3 | 50,3 | 7,06 | 8,83 | 11,47 | 8,83 | 10,59 | 3,52 | 14,11 | 28,05 |
4 | 50,3 | 6,40 | 9,15 | 10,97 | 9,15 | 11,89 | 2,74 | 14,63 | 29,09 |
Средние данные | 50,3 | 6,48±0,2 | 8,06±0,7 | 10,95±0,4 | 10,23±0,7 | 11,18±0,4 | 3,57±0,3 | 14,75±0,3 | 28,32±0,5 |
Пример 2.
Иммунизируют лабораторных мышей белковым препаратом из костного мозга лисиц по примеру 1, но перед забором крови методом декапитации животных помещают в термостат на 2-5 минут при температуре 40-42°С. Таким образом, получают 1,7±0,07 мл крови и 0,48±0,01 мл сыворотки. В таблицах 2 и 3 показаны данные исследования крови мышей, полученной заявленным способом, разделенных на две группы: с нормальной температурой тела (контроль) и нагреваемые в термостате, а в таблице 4 - разность средних показателей электрофореза, отобранной сыворотки крови мышей.
Таблица 2Лейкограмма крови мышей до и после нагревания | ||||||
Группы | Палочкоядерные нейтроф. | Сегментоядерные нейтроф. | Моноциты | Эозинофилы | Лимфоциты | |
Контроль | М±m | 8,3±0,51 | 47,9±1,0 | 2,1±0,04 | 3,2±0,30 | 38,2±0,38 |
% | 100,0 | 100,0 | 100,0 | 100,0 | 100,0 | |
Нагреваемые животные | М±m | 8,3±0,11 | 48,1±0,16 | 2,1±0,17 | 3,3±0,18 | 38,2±0,20 |
% | 100,0 | 100,4 | 100,0 | 103,1 | 100,0 |
При увеличении температуры тела животных количество и видовой состав лейкоцитов изменились незначительно в сравнении с контрольной группой животных.
Таблица 3Динамика изменения показателей иммунной защиты мышей, подвергаемых нагреванию | ||
Показатели | Температура тела мышей, °С | |
37,5 | 38,3 | |
1 | 2 | 3 |
Продолжение таблицы 3 | ||
Лейкоциты | 6,09±0,070 | 6,15±0,07 |
Общий белок | 83,7±0,45 | 85,4±1,32 |
Фагоцитарная активность | 25,8±1,57 | 29,6±1,11 |
По данным таблицы 3 видно, что показатели клеточной и гуморальной защиты животных с температурой тела 38,3°С изменились незначительно в сторону увеличения. Показатели ФА - на 14,7%, общего белка - на 2,03% в сравнении с контролем.
Таблица 4Оценка разности средних показателей, двух выборок электрофореза сыворотки крови мышей (контроль-опыт) n=10 | |||||
Показатели электрофореза г/л | Лабораторные мыши | Разница показателей | Р | ||
контроль | опыт | ||||
Общий белок | 49,5±0,91 | 85,4±1,32 | +25,90 | <0,001 | |
Альбумины | 12,0±0,64 | 25,0±1,41 | +12,93 | <0,001 | |
Глобулины | α1 | 7,0±0,40 | 11,4±0,43 | +4,42 | <0,001 |
α2 | 7,3±0,28 | 11,7±0,85 | +4,44 | <0,001 | |
β | 9,1±0,33 | 10,3±0,72 | +1,21 | >0,05 | |
γ1 | 10,3±0,26 | 20,3±0,73 | +10,05 | <0,001 | |
γ2 | 3,2±0,13 | 6,4±0,42 | +3,28 | <0,001 | |
γ1+γ2 | 13,6±0,18 | 26,8±0,41 | +13,2 | <0,001 | |
%∑ γ1+γ2 | 27,6±0,43 | 31,4±0,59 | +4,4 | <0,001 |
Отличительным преимуществом предлагаемого способа взятия крови у мышей является доступность предложенного способа, что позволяет повысить выход собираемой крови и сыворотки, не изменяя при этом ее качественные показатели, и изучить влияние иммуностимулирующих препаратов на организм животного. Так, например, у опытных животных, иммунизированных костномозговым препаратом, в 1,7 раз увеличилось содержание общего белка и в 1,9 раз γ1+γ2 глобулинов в сыворотке крови по сравнению с контролем.
Способ взятия крови у лабораторных мышей для определения концентрации общего белка, включающий забор крови при помощи декапитации животных, пробы которой помещают в микропробирки, пригодные для центрифугирования, отличающийся тем, что кровь собирают от животных, предварительно помещенных в термостат на 2-5 мин при температуре 40-42°С.