Способ повышения выживаемости половых клеток осетровых рыб при криоконсервации

Способ повышения выживаемости половых клеток осетровых рыб при криоконсервации

Реферат

Изобретение относится к рыбной промышленности и может использоваться при искусственном воспроизводстве ценных видов рыб, в частности осетровых, а также для создания криобанков с образцами генетического материала.

Известен способ замораживания спермы осетровых рыб на фторопластиковой пластине (см. ст. Савушкина С.И., Ерохина А.С. Опыт совершенствования способов криоконсервации спермы русского осетра и стерляди // Рыбное хозяйство. Серия «Аквакультура»: информ. пакет ВНИЭРХ. Проблемы сохранения геномов рыб. - М., 1999. Вып.I. - С.43-45).

Однако этот способ не обеспечивает высокой выживаемости половых клеток после дефростации, а также приемлем только для небольшого объема генетического материала, так как достаточно трудоемок.

Наиболее близким по технической сущности является способ криоконсервации половых клеток осетровых рыб, включающий: разбавление спермы протектором, эквилибрацию, замораживание ступенчатым режимом, оттаивание (см. Цветкова Л.И., Савушкина С.И., Титарева Л.Н. Методическое пособие по криоконсервации спермы карпа, лососевых и осетровых рыб. - М., 1997. - 10 с.)

Однако этот способ криоконсервации не учитывает негативного воздействия протекторов на клетки, что является основной причиной их гибели. Выживаемость сперматозоидов составляет всего 30-40%. Оплодотворяющая способность такой спермы недостаточно велика.

Техническая задача - создание способа повышения выживаемости половых клеток осетровых рыб при криоконсервации, позволяющего получать дефростированную сперму, обладающую лучшими рыбоводными качествами.

Технический результат - повышение качества дефростированной спермы осетровых рыб.

Он достигается тем, что в известном способе криоконсервации половых клеток осетровых рыб, включающем: разбавление спермы криопротектором, эквилибрацию, замораживание, оттаивание, перед эквилибрацией проводят стимулирование проникновения протектора внутрь клетки, а после оттаивания - выведение протектора из половых клеток.

Стимулирование спермы прямоугольным электрическим сигналом частотой 20 герц при амплитуде раздражителя 150 Мв в течение 1 минуты обеспечивает лучшее проникновение криопротектора внутрь клеток, при этом наблюдается высокий процент выживаемости дефростированной спермы.

После оттаивания при активации водой спермии начинают проявлять признаки жизни через 30-40 секунд. Это может быть связано с отрицательным действием протекторов. В качестве изотонического раствора, способного вывести протекторы из клеток, был избран физиологический раствор для осетровых рыб.

После дефростации сперму соединяли с раствором NaCl (6,5 г/л) в соотношении 1:1 и оставляли на 7 минут. За это время протектор вымывался из половых клеток, что способствовало их метаболизму.

Способ повышения выживаемости половых клеток осетровых рыб при криоконсервации осуществлялся следующим образом.

Пример 1. Работы по криоконсервации половых клеток осетровых рыб проводили в лаборатории «Аквакультура и биологические ресурсы» Южного научного центра РАН совместно сотрудниками кафедры «Аквакультура и водные биоресурсы» Астраханского Государственного Технического Университета. Биологический материал заготавливали на осетровых рыбоводных заводах Астраханской области (Сергиевский, Житнинский, Кизанский). Объектом исследований служила сперма севрюги.

Перед началом работы всю необходимую посуду, сперму, криозащитные среды охлаждали до температуры 10-15°С. К охлажденной сперме добавляли криозащитную среду. Соотношение спермы и криозащитной среды составляло 1:1. Затем проводили облучение прямоугольным электрическим сигналом частотой 20 герц при амплитуде раздражителя 150 Мв в течение 1 минуты.

После этого сперму разливали в предварительно пронумерованные полиэтиленовые контейнеры объемом 1,5 мл и осуществляли эквилибрацию при температуре 10-15°С в течение 40 минут.

Затем проводили глубокое замораживание образцов спермы в жидком азоте в автоматическом криозамораживателе в ступенчатом режиме (3°/мин в течение 4 минут, затем 10°) в течение 10 минут, после чего погружали сперму в жидкий азот.

Размораживание образцов биологического материала проводили на водяной бане при температуре 38-40°С в течение 40 секунд.

После появления жидкой фракции сперму соединяли с раствором NaCl (6,5 г/л) в соотношении 1:1 и оставляли на 7 минут. За это время протектор вымывался из половых клеток, это способствовало их метаболизму.

После этого проводили оценку качества спермы, криоконсервированной известным способом и предлагаемым, по двум основным рыбоводным показателям - времени жизни и проценту подвижных сперматозоидов. По времени жизни сперматозоидов в предлагаемом варианте получено преимущество в 2,2 раза по сравнению с известным способом (345 с и 159 с, соответственно); выживаемость сперматозоидов составила 80% и 60%, соответственно (табл.1).

Таблица 1
Сравнительные показатели качества дефростированной спермы прототипа и полученной новым способом
Показатели	Прототип	Новый способ
Выживаемость сперматозоидов, %	60	80
Время жизни спермиев, с	159	345

В результате использования новых операций в процессе криоконсервации спермы осетровых рыб: стимулирование электрическим сигналом и выведение протектора из клеток после разморозки, удалось получить более высокие рыбоводные качества дефростированных образцов, выживаемость сперматозоидов повышается на 20%, а время жизни на 186 с.

Способ повышения выживаемости половых клеток осетровых рыб при криоконсервации, включающий разбавление спермы протектором, эквилибрацию, замораживание ступенчатым режимом, оттаивание, отличающийся тем, что стимулирование прямоугольным электрическим сигналом частотой 20 Гц при амплитуде раздражителя 150 мВ в течение 1 мин проводят непосредственно перед эквилибрацией, а выведение протектора из клеток после дефростации с помощью раствора NaCl (6,5 г/л) в соотношении 1:1 проводят в течение 7 мин.