Способ лечения коров, больных субклиническим маститом

Способ лечения коров, больных субклиническим маститом

Реферат

Изобретение относится к ветеринарии и может быть использовано при лечении коров, больных субклиническим маститом.

Известны способы лечения коров, больных субклиническим маститом, внутривыменным введением антибиотиков, сульфаниламидных препаратов, препаратов, изготовленных из лекарственных растений.

Известен способ лечения больных коров внуривыменным введением хлорофиллипта. Для этого 1%-ный спиртовой раствор хлорофиллипта растворяют в соотношении 1:20 в 0,25%-ном стерильном растворе новокаина и вводят в дозе 30 мл двукратно с интервалом 24 часа в пораженную четверть вымени (5).

Хлорофиллипт является спиртовой настойкой эвкалипта и содержит эфирные масла, запах которых может передаться молоку и снизить его качество.

Известен способ лечения мастита препаратом маст-30, состоящим из антибиотика (тиамутин), литических ферментов и лекарственной основы (вазелиновое масло). При субклиническом мастите двукратное применение маста-30 обеспечивало 80% эффект (6).

Недостатком этого способа является то, что в состав препарата входят антибиотик и фермент, которые снижают качество молока в соседних долях, вызывают при его потреблении аллергические реакции.

Известен способ лечения коров, больных субклиническим маститом, с использованием аппарата УВЧ. Эффективность этого метода составляет 89,5-100% (4).

Недостатком этого способа является трудоемкость процесса лечения с использованием для этого дорогостоящего оборудования.

Известен способ лечения субклинического мастита с использованием препаратов на основе микробной клетки стрептоэколакт и биосан. Данные препараты вводятся внутрицистернально 1-2 раза в сутки. При скрытом мастите выздоровление наступает после 1-2 введений на 2-3 сутки (7, 1).

Недостатком этого способа является дополнительное обсеменение молока микроорганизмами, появляющееся новое раздражением паренхимы молочной железы и, как следствие, обострение патологического процесса.

Известен способ лечения коров, больных субклиническим маститом, основанный на применении короткой новокаиновой блокады нервов вымени по Д.Д.Логвинову. Для этого над основанием вымени инъецируют 150-200 мл 0,5%-ного стерильного раствора новокаина, смещая иглу в разные стороны для равномерного распределения раствора в надвыменном пространстве. Инъекции проводят с интервалом 48 часов. Выздоровление при этом способе наступает на 3-5 день (2).

Недостатками этого способа являются трудоемкость процесса введения и сильная болезненность для животного при инъекции, а также возможность занесения патогенной микрофлоры и возникновение абсцессов.

Известен способ лечения больных коров при использовании 1%-ного раствора колларгола, который наиболее близок к заявляемому и выбран в качестве прототипа. Колларгол вводят в брюшную аорту подогретым в количестве 100 мл. При необходимости инъекцию повторяют через 48 часов. Эффективность лечения в контрольной группе при этом составляет 84%, в опытной 95%, то есть на 11% выше, выздоравливают животные раньше на 1-3 дня. В опытной группе у коров быстрее восстанавливалась молочная продуктивность (3).

Достоинством данного способа является высокая бактерицидная активность колларгола, что позволяет использовать его при лечении маститов любой этиологии.

Недостатками способа являются высокая стоимость препарата и наличие в нем белковой части, что может спровоцировать аллергические реакции.

Целью изобретения является повышение эффективности способа лечения коров, больных субклиническим маститом, с использованием католита, обогащенного ионизированным серебром.

Поставленная цель достигается тем, что для лечения заболевания в брюшную аорту по способу Д.Д.Логвинова вводят католит, обогащенный ионизированным серебром. Смесь вводят в дозе 140-160 мл на животное один раз в 47-49 часов, подогретым до 38-39°С. Католит содержит в своем составе ОН^-, Н₃ ^-O₂ ^-, H₂, HO₂ ^. ,HO₂ ^-, О₂ ^- и получают при электролитическом расщеплении воды на катоде, отделенном от анода полупроницаемой мембраной. Совокупность электроннодонорных факторов католита может действовать на обмен веществ под двумя положительными аспектами: создания термодинамических преимуществ для восстановительных биохимических реакций; блокирования процессов избыточного окисления, в частности перекисного. Католит, обуславливая сдвиг редокс-потенциала биологических жидкостей в сторону электроннодонорных значений, способствует повышению активности биоантиоксидантов, стабилизирует клеточные мембраны, укрепляет неспецифический иммунитет, повышает устойчивость организма к облучению, к токсинам и ксенобиотикам. Парентеральное введение изотонического раствора католита сопровождается стимуляцией кроветворения. Католит усиливает взаимодействие Т- и В-лимфоцитов в процессе иммунной реакции на антиген и подавляет формирование антигенспецифических Т-супрессоров. В пищеварительном тракте католит взаимодействует с кормом, повышая его переваривание и усвоение, что обусловлено улучшением сублимации пищевых масс в желудочном содержимом. Ионизированное серебро действует как сильное бактерицидное средство в отношении грамположительных и грамотрицательных микробов, при этом микрофлора не может выработать иммунитета, и следовательно, не привыкает к серебру.

Для получения католита изотонический раствор натрия хлорида подвергают электролизу на приборе «Эспэро» в течение 10-12 минут до достижения рН 11-12. Католит охлаждают и проводят обогащение серебром в виде ионов с помощью ионатора «ЛК-27» до достижения конценрации ионов 10 мг/л.

Сопоставительный анализ заявляемого и используемого способов лечения субклинического мастита у коров позволяет выявить признаки, отличающие предлагаемое техническое решение от прототипа: для лечения коров, больных субклиническим маститом, используется католит с ионизированным, не связанным с ним, серебром.

Из доступной нам литературы не известно использование для лечения коров больных субклиническим маститом католита с ионизированным серебром.

Таким образом, заявляемый способ лечения соответствует критерию «новизна».

Авторы предлагают для лечения коров, больных субклиническим маститом, вводить в брюшную аорту по способу Д.Д.Логвинова католит, обогащенный ионизированным серебром. Смесь вводят в дозе 140-160 мл на животное один раз в 47-49 часов, подогретым до 38-39°С, при необходимости повторяют через 23-25 часов.

Пример выполнения. Для лечения коров, больных субклиническим маститом, по принципу пар-аналогов были сформированы две группы коров по 10 голов в каждой. Коров контрольной группы лечили внутриаортальным введением 100 мл 1%-ного раствора колларгола с интервалом в 48 часов. Коров опытной группы лечили внутриаортальным введением католита с ионизированным серебром в дозе 150 мл с интервалом 48 часов.

Коров лечили до выздоровления. Выздоровевшими считали животных, которым давали двукратную отрицательную реакцию с димастином с интервалом 24 часа. Результаты лечения отражены в таблице 1.

Таблица 1Результаты лечения коров, больных субклиническим маститом (x±Sx; n=10)
Группа	Продолжительность лечения, дни	Выздоровело голов, %
Контрольная	5,3±0,3	60
Опытная	3,2±0,5*	100
* - Р<0,05

Из результатов таблицы 1 следует, что при лечении католитом с ионизированным серебром выздоровление наступает на 2,1 дня раньше, чем при лечении колларголом. При лечении опытной группы выздоровели все больные коровы, а при лечении контрольной только 6 из 10 коров.

Через 7 дней после начала лечения от животных исследовали кровь на морфологические, биохимические и иммунологические показатели, которые сравнивали с показателями больных животных.

Из данных таблицы 2, характеризующей защитную функцию крови видно, что при проведении лечения снизилось в пределах физиологической нормы количество лейкоцитов в крови. Так при лечении коров колларголом это снижение составило 53,2%, а при применении препарата католита с серебром - 51,1%. При лечении коров контрольной группы количество сегментоядерных нейтрофилов уменьшилось на 16,2%, опытной на 26,2% (Р<0,05), при этом их значения вошли в пределы физиологической нормы. Аналогичные изменения произошли и с количеством моноцитов в крови: их количество снизилось на 24% (контрольная) и 32,6% (опытная). Количественные изменения других клеток белой крови у выздоровевших животных изменялись в течение опыта в пределах физиологической нормы.

Таблица 2Влияние колларгола и католита с серебром на защитную функцию крови коров (x±Sx, n=10)
Группа	Общее количество лейкоцитов, 109/л	Лейкограмма, %
Базофилы	Нейтрофилы	Эозинофилы	Моноциты	Лимфоциты
Юные	Палочкоядерные	Сегментоядерные
Норма	4,5-12,0	0,0-2,0	0,0-1,0	2,0-5,0	20,0-35,0	3,0-8,0	2,0-7,0	40,0-65,0
Больные	9,2±1,6	-	0,7±0,2	3,6±0,9	42,0±2,1	8,0±1,5	9,2±1,4	36,5±2,3
Контрольная	4,4±0,2	-	0,60±0,17	5,0±1,1	35,2±2,2*	7,9±1,7	7,0±1,2	43,8±2,1
Опытная	4,5±0,3	-	0,91±0,05	4,5±0,9	31,0±2,0*	7,2±1,2	6,2±1,0	50,2±3,0
* - Р<0,05

Таблица 3Состояние некоторых показателей белкового обмена в сыворотке крови коров на фоне применения колларгола и католита серебром (x±Sx, n=10)
Группа	Общий белок, г/л	Белковые фракции, %
Альбумины	Глобулины
α-глобулины	β-глобулины	γ-глобулины
Норма	72-86	30-50	12-20	10-16	25-40
Больные	69,0±2,0	39,6±3,1	9,9±0,9	18,2±4,8	32,3±5,9
Контрольная	69,0±3,0	30,6±4,2	19,2±2,7*	45,5±3,8*	4,7±1,1*
Опытная	79,0±1,0*	44,8±3,3	10,1±0,8	15,7±1,6	29,2±1,7
* - Р<0,05

Данные таблицы 3, отражающей состояние некоторых показателей белкового обмена в сыворотке крови коров после проведения лечения католитом с серебром, свидетельствуют о достоверном увеличении содержания общего белка на 14,5% (Р<0,05). Однако это увеличение произошло в пределах физиологической нормы. Изменение количества общего белка у животных контрольной группы не произошло. Необходимо отметить, что в белковых фракциях произошло увеличение α-глобулинов на 93,9% (контрольная группа) (Р<0,05) и 2,0% (опытная). В группе коров, которых лечили колларголом, произошло увеличение выше физиологической нормы β-глобулиновой фракции в 1,5 раза (Р<0,05) и снижение фракции гамма-глобулинов на 85,4% (Р<0,05). Изменения остальных показателей произошло в пределах физиологической нормы.

Изменение некоторых показателей ферментного, витаминного, липидного, минерального и азотного обмена отражено в таблице 4.

Таблица 4Некоторые показатели ферментного, витаминного, липидного, минерального и азотного обмена в сыворотке крови коров на фоне применения колларгола и католита с серебром (x±Sx, n=10)
Группа	АсАТ, нкат/л	АлАТ, нкат/л	Каротин, мкмоль/л	Холестерин, ммоль/л	Кальций, ммоль/л	Фосфор, ммоль/л	Креатинин, ммоль/л
Норма	183,4-2667,0	21,7-1000,2	0,95-66,5	4,5	1,62-3,37	0,81-2,72	0,07-0,12
Больные	340,0±60	130,0±40	8,6±1,2	4,2±0,4	1,8±0,1	1,90±0,05	0,064±0,002
Контрольная	420,0±20,0	140,0±10,0	16,2±1,2*	4,9±0,3	1,80±1,04	2,4±0,2	0,083±0,007*
Опытная	440,0±20,0	220,0±30,0	40,4±2,4*	4,1±0,2	2,1±0,5	2,2±0,2	0-088±0,008*
* - Р<0,05

Данные таблицы 4 показывают, что изменения, произошедшие к концу опыта в крови опытных и контрольных животных, не выходили за пределы физиологической нормы. Из достоверных изменений (Р<0,05) можно отметить увеличение содержания каротина на 88,4% (контрольная группа) и в 3,69 раза в опытной группе. Увеличение содержания креатинина произошло на 29,7% (контрольная) и 37,5% (опытная). Изменилось соотношение кальция к фосфору. Если у больных животных оно составляло 1:1,1, то в контрольной группе после лечения оно составляет 1:1,3. В опытной группе оно не изменилось. Во всех группах повысилась активность трансаминаз, однако она находится в физиологических пределах.

Данные об изменениях некоторых показателей естественной резистентности организма отражены в таблице 5.

Таблица 5Некоторые показатели естественной резистентности коров на фоне
применения колларгола и католита с серебром (x±Sx, n=10)
Группа животных	Фагоцитарная активность, %	Фагоцитарный индекс	Фагоцитарное число	Фагоцитарная емкость	Бактерицидная активность сыворотки крови, %
Больные	41,2±8,3	3,7±0,6	1,6±0,6	11,4±4,0	28,8±4,0
Контрольная	43,3±3,3	4,3±0,3	1,90±0,03	8,7±0,4	39,9±2,2*
Опытная	56,0±2,0	4,9±0,1	2,80±0,03	12,4±1,0	44,4±2,2*
* - Р<0,05

Из таблицы 5 видно, что в результате эксперимента в контрольной группе произошло увеличение фагоцитарной активности на 5,1%, фагоцитарного индекса на 16,2%, фагоцитарного числа на 18,8%, бактерицидной активности сыворотки крови на 38,5% (Р<0,05). Фагоцитарная емкость снизилась на 23,7%.

В опытной группе фагоцитарная активность повысилась на 35,9%, фагоцитарный индекс на 32,4%, фагоцитарное число на 75%, фагоцитарная емкость на 8,8%, бактерицидная активность сыворотки крови на 54,2%.

Экономическая эффективность на 1 рубль затрат в контрольной группе составила 0,8 рубля, в опытной 9,4 рубля.

Таким образом, применение для лечения коров, больных субклиническим маститом, католита с ионизированным серебром оказало положительное влияние на биохимические показатели сыворотки крови и показатели естественной резистентности коров. Применение для лечения больных животных католита с серебром значительно сокращает сроки выздоровления больных животных и экономически более выгодно.

Источники информации

1. Биосан при мастите у коров. / А.И.Варганов, С.П.Медведев, И.Г.Конопельцев, В.И.Слободяник, В.А.Париков // Ветеринария. - 1994. - №12. - С.31.

2. Ивашура А.И. Система мероприятий по борьбе с маститами коров. - М.: Росагропромиздат, 1991. - 240 с.

3. Колларгол при эндометрите и маститах у коров. / Е.В.Ильинский, И.А.Родин, А.Н.Коваль // Ветеринария. - 1994. - №1. - С.44-46.

4. Лечение коров при мастите полем УВЧ. / И.И.Балковой, И.И.Гришин, В.А.Коржев, В.Е.Любимов // Ветеринария. - 1991. - №№. - С.46.

5. Париков В.А. Применение препаратов без антибиотиков (хлорофиллипта) для лечения маститов у коров // Тр. Ин-та / ВНИИ незаразных болезней животных. - 1977. - T.1. - С.37-42.

6. Полянцев Н.И. Клинико-экспериментальная оценка нового противомаститного препарата маста-30. // Ветеринария. - 1997. - №12. - С.37-39.

7. Стрептоэколакт для лечения коров при мастите в период лактации. / В.М.Карташова, Ю.Н.Проскурин, В.В.Касянчук, Г.Н.Кузьмин // Ветеринария. - 1999. - №5. - С.40-41.

Способ лечения коров, больных субклиническим маститом, включающий введение в брюшную аорту бактерицидного препарата, отличающийся тем, что в качестве препарата используют изотонический раствор католита с ионизированным серебром, который вводят в дозе 140-160 мл на животное, подогретым до 38-39°С, через 47-49 ч введение раствора повторяют, при необходимости вводят в третий раз с интервалом 47-49 ч.