Штамм a1.ru.09ru2255 вируса иммунодефицита человека 1 типа субтипа а, используемый для диагностики и изучения эффективности лечебно-профилактических и вакцинных препаратов

Штамм a1.ru.09ru2255 вируса иммунодефицита человека 1 типа субтипа а, используемый для диагностики и изучения эффективности лечебно-профилактических и вакцинных препаратов

Иллюстрации

Показать все

Реферат

Изобретение относится к штамму вируса иммунодефицита человека, принадлежащего к субтипу А и может быть использовано в вирусологии, медицине и биотехнологии. Штамм является удобной природной моделью и может быть использован для разработки и усовершенствования методов диагностики ВИЧ инфекции, изучения эффективности лечебных и профилактических химиотерапевтических и вакцинных препаратов, а также для создания национальной панели штаммов ВИЧ-1.

Высокая степень генетической гетерогенности вируса иммунодефицита человека - основная проблема, с которой сталкиваются исследователи. Вариабельность нуклеотидной структуры вируса способствует быстрому возникновению штаммов, устойчивых к нейтрализующим антителам, цитотоксическим Т-лимфоцитам и противовирусным препаратам. При разработке различных вакцин необходимо учитывать высокую вариабельность вирусного генома. В настоящее время в России отсутствует репрезентативный банк характеризованных штаммов ВИЧ-1. Поэтому необходимо проводить работы по выделению, молекулярно-биологической характеризации штаммов ВИЧ-1 и созданию коллекции ВИЧ-1, которая необходима для исследования свойств новых вакцинных и терапевтических препаратов. Такая коллекция должна включать эпидемиологически значимые варианты вируса, отражающие гетерогенность ВИЧ-1, наиболее характерные для отдельных регионов или групп риска (мужчин гомосексуальной ориентации, инфицированных в нозокомиальном очаге, наркоманов и т.д.). По последним данным наибольшее распространение в Российской Федерации приобретают вирусы, принадлежащие к субтипу А, которые обнаруживаются у большинства инфицированных людей. Однако отечественные изоляты и штаммы субтипа А в литературе не описаны.

Известен штамм hominis immunodeficit virus ВИЧ-1/Россия ГМ-12-95 (Ru-1295) субтипа В подгруппы lentiviridae семейства Retroviridae для приготовления диагностических и вакцинных препаратов (патент РФ №2121502, МПК C12N 7/00, опубл. 10.11.1998 г.), содержащий следующую аминокислотную последовательность области V3: CTRPNNNTRKRIHIGPGRAYFTGRIIGDIRQAYC.

Однако, поскольку наибольшее распространение в Российской Федерации приобретают вирусы иммунодефицита человека 1 типа, принадлежащие к субтипу А, которые обнаруживаются у большинства инфицированных людей, то указанный штамм мало пригоден для целей диагностики и изучения эффективности лечебно-профилактических и вакцинных препаратов, используемых на территории России.

Наиболее близким аналогом (прототипом) являются изоляты вируса иммунодефицита человека 1 типа, включающие группу изолятов, относящихся к субтипу А, полученные в Таиланде (Biologic and Genetic Characterization of a Panel of 60 Human Immunodeficiency Virus Type 1 Isolates, Reprezenting Clades A, B, C, D, CRF02_AG, for the Development and Assesment of Candidate Vaccines // Jornal of virology, Mai 2005, p.6089-6101).

Однако и такие изоляты мало пригодны для целей диагностики и изучения эффективности лечебно-профилактических и вакцинных препаратов, используемых на территории Российской Федерации.

Техническим результатом предлагаемого изобретения является получение такого штамма ВИЧ-1, который был бы пригоден для целей диагностики и изучения эффективности лечебно-профилактических и вакцинных препаратов, используемых на территории Российской Федерации.

Указанный технический результат достигается получением нового штамма A1. RU. 09 RU 2255 вируса иммунодефицита человека ВИЧ-1 субтипа А, который выделен на территории России от пациентки 18 лет, инфицированной половым путем с диагнозом острая ВИЧ-инфекция. Штамм предназначен для включения в состав национальной панели штаммов, а также может быть использован для изучения эффективности лечебных и профилактических химиотерапевтических и вакцинных препаратов, усовершенствования методов диагностики ВИЧ-инфекции.

Заявляемый штамм вируса иммунодефицита человека ВИЧ-1 A1. RU. 09 RU 2255 депонирован в Коллекции микроорганизмов ФГУН ГНЦ ВБ «Вектор» Роспотребнадзора под номером V-412 от 15.06.09 г.

На фиг.1 приведена нуклеотидная последовательность гена pol штамма ВИЧ-1 A1. RU. 09 RU 2255, а на фиг.2 - нуклеотидная последовательность гена env штамма ВИЧ-1 A1. RU. 09 RU 2255. На фиг.3 приведена динамика накопления вирусоспецифического белка р24 в смешанной культуре МПК, инфицированной штаммом A1. RU. 09 RU 2255, а на фиг.4 - динамика накопления вирусоспецифического белка р24 в инфицированных штаммом A1. RU. 09 RU 2255 культурах клеток МТ-4 и U-937.

Характеристика заявляемого штамма

Полученный новый штамм обладает рядом вирусологических свойств, позволяющих рассматривать его как удобную природную модель для оценки эффективности новых средств диагностики и исследования новых лечебно-профилактических препаратов. Штамм обладает низкой репродуктивной активностью, по типу репликации относится к категории Slow/low, медленно размножается в неопластических Т-лимфоцитарных МТ-4 и моноцитарных клетках U 937. Цитопатическое действие вируса выражено слабо. О продукции вируса можно легко судить по накоплению вирусоспецифического белка р24. Изолят хорошо хранится при - 70°С.

Идентификацию штамма ВИЧ-1 A1. RU. 09 RU 2255 осуществляли методом определения нуклеотидных последовательностей фрагментов генома ВИЧ-1, кодирующих области гена pol и основного белка оболочки (ген env), на автоматическом секвенаторе ABI PRISM. Последующий филогенетический анализ и определение субтипа вирусного изолята осуществляли с помощью программы, представленной на интернет-сайте Стенфордского Университета (http://hivdb.stanford.edu). Определение тропности изолята к клеточным хемокиновым корецепторам проводили с помощью доступных на интернет-сайтах программ Geno2pheno (http://coreceptor.bioinf.mpi-inf.mpg.de) и WebPSSM и (http://indra.mullins.microbiol.washmgton.edu/webpssm).

Культуральные свойства. Штамм вируса выделен из лимфоцитов периферической крови пациента с диагнозом острая ВИЧ-инфекция. При получении изолята использован метод сокультивирования лимфоцитов инфицированного пациента с лимфоцитами крови здорового донора, стимулированных митогеном, а также метод инфицирования человеческих неопластических суспензионных перевиваемых клеточных линиий МТ-4 и U-937.

Репродукция. Штамм вируса реплицируется в лимфоцитах периферической крови, лимфобластоидных клеточных культурах МТ-4 и U-937. Репродукция вируса сопровождается характерным цитопатическим действием смешанного типа - гибелью отдельных клеток, образованием синцитиев из 5-10 клеток и накоплением вирусоспецифического белка р24. Штамм ВИЧ-1 A1. RU. 09 RU 2255 может поддерживаться длительное время при пассировании в смешанной культуре лимфоцитов периферической крови здоровых доноров, в культуре клеток МТ-4 или U-937. Через 4-7 дней после инфицирования клеток вирусосодержащей культуральной жидкостью инфицированная клеточная взвесь центрифугируется при 1500 об/мин и замораживается в растворе для криоконсервации (70% сыворотка крупного рогатого, 10% глицерин) при - 70°С. После размораживания вносится в свежую клеточную суспензию в соотношении 1:10.

Репродуктивные характеристики штамма определяются методом твердофазного иммуноферментного анализа по накоплению вирусоспецифического белка р24 на модели вышеуказанных клеточных культур (фиг.3, фиг.4).

Инфекционность вирусного штамма оценивали по накоплению вирусоспецифического белка р24 в культуральной жидкости на 7 и 15 день культивирования смешанной культуры стимулированных фитогемагглютинином (ФГА) МПК от двух серонегативных доноров после инфицирования этих клеток ростовой средой, взятой на 7 и 15 день культивирования выделяемого изолята путем внесения ростовой среды в культуру МПК (1:10).

Антигенные свойства. ВИЧ-1 относится к семейству retroviridae подгруппе lentiviridae. Вирусы этой подгруппы являются оболочечными РНК-содержащими вирусами с размером частиц около 100-150 нм. В составе частиц обнаруживают не менее 6 основных структурных антигенов, обладающих иммуногенными свойствами, которые могут быть выявлены в инфицированных клетках с помощью различных иммунологических и вирусологических методов.

Анализ нуклеотидной последовательности генома, филогенетический анализ и определение субтипа вирусного штамма осуществляли с помощью программы, представленной на интернет-сайте Стенфордского Университета (http://hivdb.stanford.edu). Генотипирование полученного изолята ВИЧ-1 A1. RU. 09 RU 2225 проводили путем анализа нуклеотидных последовательностей участков генов pol и env. Выбор данных генетических участков определялся тем, что их анализ позволяет различать основные варианты ВИЧ-1, циркулирующие на территории бывшего СССР. Для определения и анализа нуклеотидной последовательности гена роl использовали наборы "Виросек" ("Viroseq HIV-1 Genotyping System") фирмы "Celera Diagnostics" (США) и "АмплиСенс ВИЧ-генотип" компании "ИнтерЛабСервис" (Россия). Определение тропности изолята к клеточным хемокиновым корецепторам проводили с помощью доступных на интернет-сайтах программ Geno2pheno (http://coreceptor.bioinf.mpi-inf.mpg.de) и WebPSSM (http://indra.mullins.microbiol.washington.edu/webpssm).

Пример 1. Генотипирование штамма ВИЧ-1 A1. RU. 09 RU 2255. Генотипирование полученного штамма ВИЧ-1 A1. RU. 09 RU 2255 проводили путем анализа нуклеотидных последовательностей участков генов pol и env. Выбор данных генетических участков определялся тем, что их анализ позволяет различать основные варианты ВИЧ-1, циркулирующие на территории бывшего СССР. Для определения и анализа нуклеотидной последовательности гена pol используют наборы "Виросек" ("Viroseq HIV-1 Genotyping System") фирмы "Celera Diagnostics" (США) и "АмплиСенс ВИЧ-генотип" компании "ИнтерЛабСервис" (Россия). Для амплификации последовательности гена env с помощью полимеразной цепной реакции (ПЦР) используют следующие олигонуклеотидные праймеры:

ED3 (5'-TTAGGCATCTCCTATGGCAGGAAGAAGCGG-3'),

ED51 (5'-TGGGACCAAAGCCTAAAGCCATGTG-3'),

ED 13 (5'-AATTGTCTGGCCTGTACCGTCAGCGT-3'),

ED71 (5'-CTGTTAAATGGCAGTCTAGCA-3'),

ED8 (5'-CACTTCTCCAATTGTCCCTCA-3'),

ED32 (5'-CCTTTGAGCCAATTCCTATACATTATTGTG-3'),

ED34 (5'-GGAGGGGCATACATTGCTTGTCCTA-3').

Вирусоспецифическую РНК выделяют из образцов сыворотки. Вирусоспецифическую ДНК получают методом обратной транскрипции вирусной РНК и используют для последующей амплификации методом гнездовой полимеразной цепной реакции. Определение нуклеотидных последовательностей проводят автоматически на приборе модели 3130×1 фирмы "Аплайд Байосистемс" (США).

Полученные последовательности генома ВИЧ-1 включают в себя: для гена pol - полноразмерную нуклеотидную последовательность гена протеазы и частичную последовательность гена обратной транскриптазы - 1323 нуклеотидных остатков (фиг.1), для гена env - частичную нуклеотидную последовательность основного белка оболочки вируса (gp120) - 732 нуклеотидных остатков, включая область V3 (фиг.2).

Полученные данные показывают, что штамм ВИЧ-1 A1. RU. 09 RU 2255 является оригинальным штаммом ВИЧ-1 и относится к субтипу А. Проведенный с помощью программ Geno2pheno и WebPSSM анализ указывает на то, что изолят ВИЧ-1 A1. RU. 09 RU 2255 обладает наибольшей тропностью к клеточным хемокиновым корецепторам СХСК4-типа.

Проведенный с помощью программы jpHMM-HIV (http://jphmm.gobics.de/) анализ показал, что изолят A1. RU. 09 RU 2255 характеризуется уникальной генетической организацией локуса pol.

Пример 2. Для выделения первичных изолятов ВИЧ-1 мононуклеары периферической крови (МПК) от больного культивируют со смешанной культурой стимулированных фитогемагглютинином (ФГА) МПК от двух серонегативных доноров. Выделение МПК проводят центрифугированием цельной крови на градиенте Ficoll. ФГА стимуляцию донорских МПК проводят 2-3 суток (5 мкг ФГА/мл). Для сокультивирования смешивают 4-6×10⁶ МПК клеток пациента с 8-12×10⁶ МПК клеток донора в 10 мл ростовой среды (PC) следующего состава - RPMI-1640, 20% эмбриональной сыворотки крупного рогатого скота (КРС), 100 e.a./мл IL-2, 300 мг/мл глутамина, 150 мкг/мл линкомицина и 100 мкг/мл гентамицина. Через каждые 3-4 суток проводят замену культуральной среды. Отобранную культуральную жидкость анализируют на содержание р24 антигена и криоконсервируют при - 70°С. На 7 и 15 день сокультивирования после замены культуральной среды к оставшимся инфицированным клеткам добавляют 4-6×10⁶ ФГА-активированных донорских МПК. Репликацию вируса оценивают по накоплению вирусоспецифического белка р24. Вирусоспецифический белок р24 выявляют в культуральной жидкости методом твердофазного иммуноферментного анализа с помощью иммуноферментной тест-системы для определения и подтверждения присутствия р24-антигена ВИЧ-1 «ВектоВИЧ-1 р24-антиген-подтверждающий тест ФСП 42-0117-5686-04», с чувствительностью - 5 пг/мл по ОСО ГИСК., или набора реагентов для иммуноферментного выявления антител к ВИЧ-1,2 и антигена р24 ВИЧ-1 «КомбиБест ВИЧ-1,2 АГ/АТ, ТУ 9398-098-23548172-2007».

На фигуре 3 представлены результаты накопления р24 в культуральной жидкости в процессе культивирования изолята ВИЧ-1 в смешанной, активированной митогеном культуре МПК, отражающие динамику репродукции вируса. Изолят характеризуется низкой скоростью накопления вирусного белка р24 и концентрация белка достигает максимального значения (410744 пкг/мл) лишь на 25 сутки. По типу репликации заявляемый штамм можно отнести к категории Slow/low.

Пример 3. Изучение накопления вируса в различных культурах клеток. Суспензию клеток МТ-4 или U-937 инфицируют культуральной жидкостью от инфицированной смешанной культуры МПК методом совместной инкубации в соотношении 5×10⁶ клеток на 1 мл культуральной жидкости в течение 1 ч при температуре 37°С. Центрифугируют при 1000 об/мин 5 мин, супернатант удаляют, клетки ресуспендируют в питательной среде RPMI-1640 с добавлением 10% фетальной сыворотки, предварительно инактивированной прогреванием при 56°С в течение 30 минут, 300 мг/мл L-глютамина, 80 мкг/мл гентамицина и 30 мг/мл линкомицина до концентрации 0,5×10⁶ клеток в миллилитре. Флаконы с культурой клеток инкубируют в термостате при 37°С. Контроль цитопатического действия вируса и синцитеобразования проводят методом инвертированной микроскопии клеточной суспензии в культуральных флаконах. Через каждые 3-4 суток проводят замену культуральной среды. Отобранную культуральную жидкость анализируют на содержание р24 антигена и криоконсервируют при - 70°С. На 10 день культивирования после замены культуральной среды к оставшимся инфицированным клеткам добавляют суспензию неинфицированной клеточной культуры в ростовой среде с концентрацией 1×10⁶ клеток/мл. Репликацию вируса оценивают по накоплению вирусоспецифического белка р24. Вирусоспецифический белок р24 выявляют в культуральной жидкости методом твердофазного иммуноферментного анализа с помощью иммуноферментной тест-системы для определения и подтверждения присутствия р24-антигена ВИЧ-1 «ВектоВИЧ-1 р24-антиген-подтверждающий тест ФСП 42-0117-5686-04 », с чувствительностью - 5 пг/мл по ОСО ГИСК., или набора реагентов для иммуноферментного выявления антител к ВИЧ-1,2 и антигена р24 ВИЧ-1 «КомбиБест ВИЧ-1,2 АГ/АТ, ТУ 9398-098-23548172-2007».

На фигуре 4 представлены результаты накопления р24 в культуральной жидкости в процессе культивирования изолята ВИЧ-1 в неопластических Т-лимфоцитарных клетках МТ-4 и моноцитарных U-937, отражающие динамику репродукции вируса. Видно, что изолят характеризуется различной скоростью и динамикой накопления вирусного белка р24 на разных культурах клеток. Для обоих культур наблюдается медленное повышение концентрации белка с достижением максимального значения на 21 день культивирования. Превышение концентрации белка р24 при культивировании изолята на моноцитарной культуре U-937 по сравнению с культивированием на неопластических Т-лимфоцитарных клетках МТ-4, вероятно, объясняется различным тропизмом изолята к клеточным культурам вследствие того, что эти культуры отличаются набором хемокиновых корецепторов на поверхности клеток.

Заявляемый штамм ВИЧ-1 A1.RU.09RU2255 используется при разработке национальной панели генетически и биологически характеризованных штаммов ВИЧ-1, имеющих эпидемиологическую значимость на территории России (субтип А составляет более 90%) для стандартизации оценки эффективности разрабатываемых вакцинных и противовирусных препаратов. Панель для оценки эффективности вакцин создается из штаммов, выделенных от больных в острой стадии ВИЧ-инфекции. Кроме того, панель должна включать генетически и биологически разнородные штаммы, относящиеся к одному субтипу ВИЧ-1, максимально представляющие разнообразие возможных циркулирующих на данной территории вирусных вариантов, что позволит проводить более адекватную и корректную оценку противовирусного эффекта препаратов на модели, максимально приближенной к реальным процессам, протекающим в организме инфицированного ВИЧ-1 человека.

Заявляемый штамм ВИЧ-1 A1. RU. 09 RU 2255 предполагается использовать также в панели для оценки эффективности противовирусных препаратов. Панель для оценки эффективности противовирусных препаратов включает генетически и биологически различные штаммы ВИЧ, выделенные от инфицированных ВИЧ-1 пациентов на разных стадиях заболевания и в том числе от больных, принимавших противовирусные препараты. Наличие такой панели в России позволит проводить стандартизованную адекватную оценку перспективных противовирусных препаратов для лечения ВИЧ-инфекции, что является актуальной проблемой для России, так как в нашей стране есть научный потенциал для разработки лекарственных препаратов, но нет сертифицированного инструмента для отбора препаратов по их эффективности в отношении ВИЧ-1 на модели живого вируса.

Кроме того, заявляемый штамм ВИЧ-1 может использоваться в качестве продуцента антигенов, входящих в диагностические наборы и тест-системы, в частности антигенов ВИЧ-1, необходимых для производства иммуноферментных диагностических тест-систем на выявление ВИЧ-инфекции и наборов для иммуноблота, подтверждающего ВИЧ-инфекцию у вновь выявленных больных.

Штамм A1. RU. 09 RU 2255 вируса иммунодефицита человека 1 типа субтипа А, используемый для диагностики и изучения эффективности лечебно-профилактических и вакцинных препаратов, депонированный в Коллекции микроорганизмов ФГУН ГНЦ ВБ «Вектор» Роспотребнадзора под номером V-412 и имеющий нуклеотидную последовательность гена pol, приведенную на фигуре 1, и нуклеотидную последовательность гена env, приведенную на фигуре 2.