Вариантная форма урат-оксидазы и ее использование

Вариантная форма урат-оксидазы и ее использование

Иллюстрации

Показать все

Реферат

Перекрестные ссылки к родственным изобретениям

Настоящая заявка утверждает приоритет и преимущество заявки США на временное применение, серийный №60/670541, заполненной 11 апреля 2005 года, раскрытие которой включено сюда посредством ссылки.

Область изобретения

Настоящее изобретение касается генетически модифицированных белков, имеющих уриколитическую активность. Более конкретно, изобретение касается белков, содержащих усеченный вариант урат-оксидазы, и методов их получения.

Предпосылки к созданию изобретения

Термин урат-оксидаза и уриказа используются здесь взаимозаменяемо. Урат-оксидаза (уриказа; E.C. 1.7.3.3) являются ферментами, катализирующими окисление мочевой кислоты до более растворимого продукта, аллантоина, пуринового метаболита, подвергающегося более легкой экскреции. В человеческом организме не образуется энзиматически активной уриказы, что является результатом нескольких мутаций в гене уриказы, приобретенных во время эволюции высших приматов. Wu, X. et al., (1992) J Mol Evol 34: 78-84, включенная сюда во всем объеме посредством ссылки. В результате этого у восприимчивых индивидуумов повышенная концентрация мочевой кислоты в крови (гиперурикемия) может привести к болезненным артритам (подагре), обезображивающим отложениям мочевины (отложений) и почечной недостаточности. Hande, KR, et al., (1984) Am J Med 76: 47-56; Fam, AG, (1990) Bailliere's Clin Rheumatol 4: 177-192, каждое из которого включено сюда во всем объеме посредством ссылки. Инъекция уриказы может ослабить гиперурикемию и гиперурикозурия, по меньшей мере временно. Поскольку уриказа является чужеродным белком для человеческого организма, даже первая инъекция немодифицированного белка, полученного из Aspergillus flavus, приводит к анафилактическим реакциям у нескольких процентов пациентов (Pui, C-H, et al., (1997) Leukemia 11: 1813-1816, включенная сюда во всем объеме посредством ссылки), и имунная реакция ограничивает его использование для хроничекой или периодической терапии. Donadio, D, et al., (1981) Nouv Presse Med 10: 711-712; Leaustic, M, et al., (1983) Rev Rhum Mal Osteoartic 50: 553-554, каждое из которых включено сюда во всем объеме посредством ссылки.

Настоящее изобретение касается мутантной рекомбинантной уриказы, имеющей усечения и увеличенную структурную стабильность.

Сущность изобретения

Объектом настоящего изобретения является представление новых рекомбинантных белков уриказ. Белки рассматриваемого изобретения будут усеченными и будут иметь мутированные аминокислоты по отношению к встречающимся в природе белкам уриказам.

Рассматриваемое изобретение предоставляет мутантную рекомбинантную уриказу, содержащую последовательность аминокислот №8 (SEQ ID NO. 8). Также предоставлена мутантная рекомбинантная уриказа, содержащая последовательность аминокислот №13 (SEQ ID NO. 13).

Дополнительным объектом настоящего изобретения является предоставление способов метаболизирования мочевой кислоты, включающих новый рекомбинантный белок уриказу, имеющую уриколитическую активность. Уриколитическая активность понимается здесь как способность осуществлять энзиматическое превращение мочевой кислоты в аллантоин.

В варианте осуществления, уриказа содержит последовательность аминокислот с позиции 8 по позицию 287 последовательности №7 (SEQ ID NO. 7) или последовательности №12 (SEQ ID NO. 12). Также предоставлены уриказы, содержащие последовательности аминокислот №8 (SEQ ID NO. 8) или №13 (SEQ ID NO. 13). В варианте осуществления, уриказа содержит N-концевой аминокислотный остаток, являющийся остатком аланина, глицина, пролина, серина или треонина. В отдельном варианте осуществления, N-концевой остаток является остатком метионина.

Также предоставлены отдельные нуклеотидные последовательности, содержащие последовательности нуклеотидов, последовательность нуклеотидов, кодирующих уриказу изобретения. В отдельном варианте осуществления последовательность нуклеотидов, кодирующая уриказу, оперативно связана с гетерологичным промотором, например промотором osmB. Также предоставлены нуклеиновокислотные векторы, содержащие кодирующую уриказу нуклеотидную последовательность, клетки-хозяева, содержащие такие векторы, и способы получения уриказы, включающие стадии, культивирования таких клеток-хозяев при условиях, в которых последовательность нуклеотидов экспрессируется в клетках-хозяевах, и выделение экспрессируемой уриказы.

Краткое описание чертежей

Фиг.1 иллюстрирует структуру плазмиды pOUR-P-ΔN-ks-1. Цифры возле сайтов рестрикции обозначают номера нуклеотидов относительно сайта HaeII, принятого за 1. В скобках обозначены сайты рестрикции, исчезающие во время процедуры клонирования.

Фиг.2 изображает последовательность ДНК и транслированную последовательность аминокислот уриказы Pig-KS-ΔN (последовательность №9 [SEQ ID NO. 9] и №7 [SEQ ID NO. 7] соответственно). Номера аминокислотных остатков на Фиг.2 даны относительно полной последовательности уриказы свиньи. Следующий за первым метионином треонин соответствует замещаемому аспартату в положении 7 последовательности уриказы свиньи. Обозначены используемые на различных стадиях субклонирования сайты рестрикции. 3'-нетранслируемая область выделена строчными буквами. Стоп-кодон трансляции обозначен звездочкой.

Фиг.3 демонстрирует выравнивание транслированных последовательностей аминокислот различных уриказ: рекомбинантной свиной (последовательность №11 [SEQ ID NO. 11]), PBC-ΔNC (последовательность №12 [SEQ ID NO. 12]) и Pig-KS-ΔN (последовательность №7 [SEQ ID NO. 7]). Звездочками отмечены положения, в которых имеются различия в аминокислотной последовательности pig-KS-ΔN и опубликованной последовательности уриказы свиньи; кружками обозначены положения, в которых имеются различия в аминокислотной последовательности pig-KS-ΔN и PBC-ΔN. Пунктирными линиями обозначены отсутствующие аминокислоты.

Фиг.4 демонстрирует СДС-ПААГ (разделение в денатурирующем полиакриламидном геле) уриказы свиньи и высоко очищенных вариантов уриказы, полученных согласно Примерам 1-3. Дата получения (месяц/год) и соответствующий номер дорожки для каждой пробы даны в нижеследующем ключе. По оси Y отмечены молекулярные массы белков маркера, номера дорожек обозначены наверху чертежа. На дорожки нанесены: дорожка 1 - маркер молекулярной массы; дорожка 2 - Pig KS-ΔN (7/98); дорожка 3 - Pig (9/98): дорожка 4 - Pig KS (6/99); дорожка 5 - Pig KS (6/99); дорожка 6 - Pig-ΔN (6/99); дорожка 7 - Pig KS-ΔN (7/99); дорожка 8 - Pig KS-ΔN (8/99).

Фиг.5 иллюстрирует фармакокинетические профили ПЭГ-конъюгированной (9×10 кДа) Pig-KS-ΔN уриказы у крыс после ВМ (внутримышечного), ПК (подкожного) и ВВ (внутривенного) введения, определенные с помощью мониторинга энзиматической активности в пробах крови. Активность уриказы в пробах плазмы, отобранных в указанные временные точки, определяется с помощью колориметрии. Значения активности (mAU = тысячная доля единицы абсорбции) представляют скорость энзиматической реакции на 1 мкл плазмы крови. Биодоступность (количество вещества, попавшего в кровь по отношению к внутривенной инъекции) введенной уриказы была рассчитана, исходя из площади кривой на графике.

Фиг.6 иллюстрирует фармакокинетические профили ПЭГ-конъюгированной (9×10 кДа) Pig-KS-ΔN уриказы у кроликов после ВМ (внутримышечного), ПК (подкожного) и ВВ (внутривенного) введения, определенные с помощью мониторинга энзиматической активности в пробах крови. Активность уриказы в пробах плазмы, отобранных в указанные временные точки, определяется с помощью колориметрии. Значения активности (mAU = тысячная доля единицы абсорбции) представляют скорость энзиматической реакции на 1 мкл плазмы крови. Биодоступность (количество вещества, попавшего в кровь по отношению к внутривенной инъекции) введенной уриказы была рассчитана, исходя из площади кривой на графике.

Фиг.7 иллюстрирует фармакокинетические профили ПЭГ-конъюгированной (9×10 кДа) Pig-KS-ΔN уриказы у собак после ВМ (внутримышечного), ПК (подкожного) и ВВ (внутривенного) введения, определенные с помощью мониторинга энзиматической активности в пробах крови. Активность уриказы в пробах плазмы, отбираемых в указанные временные точки, определяется с помощью колориметрии. Значения активности (mAU = тысячная доля единицы абсорбции) представляют скорость энзиматической реакции на 1 мкл плазмы крови. Биодоступность (количество вещества, попавшего в кровь по отношению к внутривенной инъекции) введенной уриказы была рассчитана, исходя из площади кривой на графике.

Фиг.8 иллюстрирует фармакокинетические профили ПЭГ-конъюгированной (9×10 кДа) Pig-KS-ΔN уриказы у свиней после ВМ (внутримышечного), ПК (подкожного) и ВВ (внутривенного) введения, определенные с помощью мониторинга энзиматической активности в пробах крови. Активность уриказы в пробах плазмы, отбираемых в указанные временные точки, определяется с помощью колориметрии. Значения активности (mAU = тысячная доля единицы абсорбции) представляют скорость энзиматической реакции на 1 мкл плазмы крови. Биодоступность (количество вещества, попавшего в кровь по отношению к внутривенной инъекции) введенной уриказы была рассчитана, исходя из площади под кривой на графике.

Подробное описание изобретения

Из предыдущих исследований известно, что хотя значительное снижение иммуногенности и/или антигенности уриказы достигается при конъюгировании с ПЭГ (полиэтиленгликоль), это ассоциировано с существенной потерей уриколитической активности. В безопасность, удобство и экономическую эффективность биофармацевтических препаратов вносит отрицательный вклад снижение их действенности и, как следствие, необходимость увеличения применяемой дозы. Таким образом, существует потребность в безопасных и эффективных альтернативных способах снижения повышенного уровня мочевой кислоты в жидкостях тела, включая кровь. Настоящее изобретение предоставляет мутантную рекомбинантную уриказу, содержащую аминокислотные последовательности №7, 8, 12 или 13 (SEQ ID NO. 7, SEQ ID NO. 8, SEQ ID NO 12 или SEQ ID NO. 13).

Уриказа, как здесь использовано, включает индивидуальные субъединицы, так же как тетрамер, если не обозначено другое.

В отдельном варианте осуществления уриказа имеет N-концевой метионин. Этот метионин может быть изъят при посттрансляционных модификациях. В отдельном варианте осуществления N-концевой метионин изымается после получения уриказы. В отдельном варианте осуществления, метионин изымается эндогенной бактериальной аминопептидазой. Предпоследней аминокислотой может быть та, которая позволяет изъятие N-концевого метионина бактериальной метионин-аминопептидазой (MAP). Аминокислотами, позволяющими наиболее полное изъятие N-концевого метионин, являются аланин, глицин, пролин, серин и треонин. В отдельном варианте осуществления, уриказа содержит две N-концевых аминокислоты, где две N-концевых аминокислоты являются метионином с последующей аминокислотой, выбираемой из группы, состоящей из аланина, глицина, пролина, серина и треонина.

Рассматриваемое изобретение предоставляет последовательность нуклеотидов, кодирующую уриказу.

Рассматриваемое изобретение предоставляет вектор, содержащий эту последовательность нуклеотидов.

В отдельном варианте осуществления уриказу выделяют. В отдельном варианте осуществления уриказу очищают. В отдельном варианте осуществления уриказу выделяют и очищают.

Рассматриваемое изобретение предоставляет клетки-хозяева, содержащие вектор, содержащий кодирующую уриказу последовательность нуклеотидов.

Рассматриваемое изобретение предоставляет способ получения кодирующей уриказу последовательности нуклеотидов, включающий модификацию кодирующей уриказу последовательности нуклеотидов методом ПЦР (полимеразной цепной реакции). Специалист в технологии понимает, что желаемая последовательность нуклеотидов получается в ПЦР при использовании синтетических олигонуклеотидных праймеров, комплементарных участку ДНК (один для каждой цепи), который должен быть амплифицирован. Праймеры добавляют кДНК-мишени (которая не должна быть чистой) в присутствии избытка дезоксинуклеотидов и Taq-полимеразы, устойчивой к нагреванию полимеразы. В серии (обычно 30) температурных циклов повторяется денатурация ДНК-мишени (примерно 90°С), отжига праймеров (обычно примерно 50-60°С) и удлинения дочерних цепей с праймеров (72°С). Поскольку дочерние цепи сами по себе являются матрицами для последующих циклов, фрагменты ДНК, соответствующие обоим праймерам, амплифицируются скорее экспоненциально, чем линейно.

Рассматриваемое изобретение предоставляет способ получения мутантной рекомбинантной уриказы, включающий трансфекцию клеток-хозяев вектором, где клетки-хозяева экспрессируют уриказу, выделение мутантной рекомбинантной уриказы из клеток-хозяев, выделение чистой мутантной рекомбинантной уриказы, например, используя подходы хроматографии, и очистку мутантной рекомбинантной уриказы. Например, уриказа может быть получена в соответствии с методом, описанным в международной патентной публикации № WO 00/08196 и заявке США №60/095489, включенных сюда во всем объеме посредством ссылок.

В предпочтительном варианте осуществления клетки-хозяева обрабатывают таким образом, что это приводит к экспрессии мутантной рекомбинантной уриказы. Специалист в технологии осведомлен, что трансфекция клеток вектором обычно совершается с использованием ДНК, осажденной с ионами кальция, хотя различные другие методы могут быть использованы (например, электропорация).

Уриказа может быть выделена и/или очищена любым методом, известным специалисту в технологии. Экспрессируемые полипептиды данного изобретения обычно выделяются в достаточно чистой форме. Предпочтительно, полипептиды выделяются до чистоты как минимум 80% по массе, более предпочтительно - до чистоты как минимум 95% по массе, и более предпочтительно до чистоты как минимум 99% по массе. В общем, такая очистка может быть достигнута, например, стандартными техниками высаливания сульфатом аммония, СДС-ПААГ и афинной хроматографией. Уриказу предпочтительно изолируют с использованием катионного сурфактанта, например хлорид цетил-пиридина (CPC), в соответствии с методом, описанным в рассматриваемых одновременно заявке на патент США, заполненной 11 апреля 2005 года, имеющей номер 60/670520 и номер 103864.146644 по картотеке патентного поверенного, озаглавленным «Очистка белков с катионными сурфактантами», включенным сюда во всем объеме посредством ссылки.

В варианте осуществления изобретения экспрессия последовательности с вектора находится под контролем промотора, чувствительного к осмотическому стрессу. Промотор - это участок ДНК, с которым связывается РНК-полимераза перед инициацией транскрипции ДНК в РНК. Промотор, чувствительный к осмотическому стрессу, инициирует транскрипцию в результате ощущаемого клеткой осмотического давления.

Уриказа изобретения включает уриказу, конъюгированную с полимером, например, уриказу, конъюгированную с полиэтиленгликолем, т.е. ПЭГ-конъюгированную уриказу.

В варианте осуществления изобретения предоставлена фармацевтическая композиция, содержащая уриказу. В одном варианте осуществления композиция является раствором уриказы. В предпочтительном варианте осуществления раствор стерилен и пригоден для инъекции. В одном варианте осуществления такая композиция содержит уриказу в качестве раствора в фосфатно-солевом буфере. В одном варианте осуществления композиция поставляется в пузырьках, имеющих необязательно резиновый инъекционный стопор. В отдельном варианте осуществления композиция содержит уриказу в растворе в концентрации от 2 до 16 миллиграммов уриказы на миллилитр раствора, от 4 до 12 миллиграммов на миллилитр или от 6 до 10 миллиграммов на миллилитр. В предпочтительном варианте осуществления композиция содержит уриказу в концентрации 8 миллиграммов на миллилитр. Предпочтительно, масса уриказы измеряется с учетом массы белка.

Эффективный режим применения композиции изобретения может быть определен специалистом в технологии. Подходящие индикаторы для оценки эффективности данного режима известны специалисту в технологии. Примеры таких индикаторов включают нормализацию или понижение уровня мочевой кислоты в плазме (PUA) и понижение или поддержание PUA на уровне 6,8 мг/мл или ниже, предпочтительно 6 мг/мл или ниже. В предпочтительном варианте осуществления субъект, проходящий лечение с использованием данной композиции, имеет PUA на уровне 6 мг/мл или ниже в течение как минимум 70%, как минимум 80% или как минимум 90% общего времени лечения. Например, для периода времени в 24 недели, субъект предпочтительно имеет PUA на уровне 6 мг/мл или ниже в течение как минимум 80% 24-недельного периода времени, т.е. в течение как минимум времени, равного 134,4 дням (24 недели × 7 дней/неделю × 0,8 = 134,4 дня).

В отдельном варианте осуществления от 0,5 до 24 мг растворенной уриказы вводят раз в каждые 2-4 недели. Уриказа может быть введена любым подходящим способом, известным специалисту в технологии, например внутривенно, внутримышечно или подкожно. Предпочтительно, в случае внутривенного введения, вводят от 0,5 до 12 мг уриказы. Предпочтительно, в случае подкожного введения, вводят от 4 до 24 мг уриказы. В предпочтительном варианте осуществления введение уриказы при внутривенной инфузии осуществляется в течение периода времени от 30 до 240 минут. В одном варианте осуществления 8 мг уриказы вводят раз в каждые две недели. В отдельном варианте осуществления инфузия может быть осуществлена с использованием от 100 до 500 мл раствора. В предпочтительном варианте осуществления 8 мг раствора уриказы вводят в течение 120 минут раз в каждые 2 недели или каждые 4 недели; предпочтительно уриказу растворяют в 250 мл солевого раствора для инфузии (физиологического раствора). В отдельном варианте осуществления лечение с применением уриказы осуществляют в течение 3 месяцев, 6 месяцев, 8 месяцев или 12 месяцев. В другом варианте осуществления, период лечения составляет 12 недель, 24 недели, 36 недель или 48 недель. В отдельном варианте осуществления период лечения составляет более продолжительное время, например 2 года или дольше, вплоть до всей продолжительности жизни субъекта. В довершение множественные периоды лечения могут быть прерываемы периодами без лечения, например, 6 месяцев лечения с последующими 3 месяцами без лечения, затем 6 месяцев лечения и т.д.

В определенном варианте осуществления противовоспалительные соединения могут быть применены для элиминирования или уменьшения реакций на инфузию из-за применения уриказы. В одном варианте осуществления как минимум один кортикостероид, как минимум один антигистамин, как минимум один NSAID (нестероидное антивоспалительное лекарство) или их комбинации применяют таким образом. Подходящие кортикостероиды включают бетаметазон, будесонид, кортизон, дексаметазон, гидрокортизон, метилпреднизолон преднизолон, преднизон и триамцинолон. Подходящие NSAID включают ибупрофен, индометацин, напроксен, аспирин, ацетоминофен, целекоксиб и валдекоксиб. Подходящие антигистамины включают азатадин, бромфенирамин, цетиризин, хлорфенирамин, клемастин, ципрогептадин, деслоратадин, дексохлорфенирамин, дименгидринат, дифенгидрамин, доксиламин, фексофенадин, гидроксизин, лоратадин и фениндамин.

В предпочтительном варианте осуществления антигистамином является фексофенадин, NSAID является ацетаминофен и кортикостероидом является гидрокортизон и/или преднизон. Предпочтительно, комбинация всех трех компонентов (необязательно одновременно) применяется перед инфузией раствора уриказы. В предпочтительном варианте осуществления NSAID и антигистамин применяются перорально за 1-4 часа перед инфузией уриказы. Подходящая доза фексофенадина включает количества от примерно 30 до примерно 180 мг, от примерно 40 до примерно 150 мг, от примерно 50 до примерно 120 мг, от примерно 60 до примерно 90 мг, примерно 60 мг, предпочтительно 60 мг. Подходящая доза ацетоминофена включает количества от примерно 500 до примерно 1500 мг, от примерно 700 до примерно 1200 мг, от примерно 800 до примерно 1100 мг, примерно 1000 мг, предпочтительно 1000 мг. Подходящая доза гидрокортизона включает количества от примерно 100 до примерно 500 мг, от примерно 150 до примерно 300 мг, примерно 200 мг, предпочтительно 200 мг. В одном варианте осуществления антигистамин не является дифенгидрамином. В другом варианте осуществления, NSAID не является ацетоминофеном. В предпочтительном варианте осуществления 60 мг фексофенадина применяется перорально за ночь до инфузии уриказы, 60 мг фексофенадина и 1000 мг ацетаминофена применяются перорально на следующее утро и, наконец, 200 мг гидрокортизона применяются непосредственно инфузией раствора уриказы. В одном варианте осуществления преднизон применяется за день, предпочтительно вечером, до применения уриказы. Подходящая доза преднизона включает количества от 5 до 50 мг, предпочтительно 20 мг. В определенном варианте осуществления эти профилактические процедуры для элиминирования или уменьшения случаев реакций на инфузию применяются по отношению к пациентам, получающим или готовым получить уриказу, в том числе ПЭГ-конъюгированную и ПЭГ-неконъюгированную уриказы. В отдельном варианте осуществления эти профилактические процедуры применяются по отношению к пациентам, получающим или готовым получить терапевтические пептиды, другие чем уриказа, в случает ПЭГ-конъюгированных или ПЭГ-неконъюгированных терапевтических пептидов.

В варианте осуществления фармацевтическая композиция содержит конъюгат уриказы с полимером, и модифицированная уриказа сохраняет уриколитическую активность. В предпочтительном варианте осуществления уриказа является ПЭГ-конъюгированной уриказой.

В варианте осуществления фармацевтическая композиция содержит уриказу, подвергшуюся модификации при конъюгировании с полимером, и модифицированная уриказа сохраняет уриколитическую активность. В отдельном варианте осуществления, конъюгат полимера и уриказы готовят в соответствии с описанием, приведенным в международной патентной публикации № WO 01/59078 и заявке США №09/501730, включенных сюда во всем объеме посредством ссылок.

В варианте осуществления полимер выбирают из группы, содержащей полиэтиленгликоль, декстран, полипропиленгликоль, гидроксипропилметилцеллюлозу, карбоксиметилцеллюлозу, поливинилпирролидон и поливиниловый спирт. В предпочтительном варианте осуществления полимером является полиэтиленгликоль и уриказа является ПЭГ-конъюгированной уриказой.

В варианте осуществления композиция содержит 2-12 молекул полимера на одну субъединицу уриказы, предпочтительно от 3 до 10 молекул полимера на одну субъединицу уриказы. В варианте осуществления каждая молекула полимера имеет молекулярный вес между примерно 1 и примерно 100 кДа.

В другом варианте осуществления изобретения каждая молекула полимера имеет молекулярный вес между примерно 1 и примерно 50 кДа. В предпочтительном варианте осуществления изобретения каждая молекула полимера имеет молекулярный вес между примерно 5 и примерно 20 кДа, примерно 8 и примерно 15 кДа, примерно 10 и примерно 12 кДА, предпочтительно примерно 10 кДа. В предпочтительном варианте осуществления каждая молекула полимера имеет молекулярный вес от примерно 5 до примерно 20 кДа. В особенно предпочтительном варианте осуществления изобретения каждая молекула полимера имеет молекулярный вес примерно 10 кДа.

В варианте осуществления изобретения композиция является подходящей для повторяемого введения композиции.

Объект изобретения предоставляет способы метаболизации мочевой кислоты с использованием уриказы.

Объект изобретения предоставляет использование соединения уриказы для уменьшения уровня мочевой кислоты в биологической жидкости.

В варианте осуществления изобретения композиция уриказы используется для уменьшения уровня мочевой кислоты в биологической жидкости, включая кровь.

Также предоставлены новые молекулы нуклеиновых кислот, кодирующих уриказу изобретения. Манипуляции, результатом которых является их производство, хорошо известны специалисту в технологии. Например, нуклеотидная последовательность уриказы может быть модифицирована с помощью любой из множества стратегий, известных в технологии (Maniatis T., 1990, Molecular Cloning, A Laboratory Manual, 2^nd ed., Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, N.Y.). Последовательность может быть расщеплена по подходящим сайтам с помощью эндонуклеаз(ы) рестрикции, с последующей энзиматической модификацией, если желательно, изолирована и лигирована in vitro. При производстве гена, кодирующего уриказу, особое внимание следует уделить тому, чтобы модифицированный ген остался внутри подходящей рамки считывания, непрерываемой стоп-сигналом трансляции.

Последовательность нуклеотидов, кодирующая белок-уриказу, может быть вставлена в подходящий экспрессионный вектор, т.е. вектор, содержащий необходимые элементы для транскрипции и трансляции встроенной белок-кодирующей последовательности. Разнообразные системы векторов-носителей могут быть использованы для экспрессии белок-кодирующей последовательности. Они включают, но не только, линии клеток млекопитающих, инфицированных вирусом (например, вирусом коровьей оспы, аденовирусами и т.д.); линии клеток насекомых, инфицированных вирусами (например, бакуловирусами); микроорганизмы, такие как дрожжи, содержащие дрожжевые векторы или бактерии, трансформированные ДНК бактериофага, плазмидной ДНК или космидной ДНК. Экспрессионные элементы этих векторов различаются по силе и специфичности. В зависимости от используемой системы вектора-хозяина может быть использован любой из списка подходящих элементов для транскрипции и трансляции.

Любой из известных методов для введения фрагментов ДНК в вектор может быть использован для конструирования экспрессионного вектора, содержащего химерный ген, состоящий из подходящего элемента контроля транскрипции/трансляции и последовательности, кодирующей белок. Эти методы могут включать техники синтетические и in vitro рекомбинантной ДНК, а также in vivo рекомбинации (генетической рекомбинации). Экспрессия последовательностей нуклеиновых кислот, кодирующих белок-уриказу, может быть регулируема с помощью второй последовательности нуклеотидов таким образом, что белок-уриказа будет экспрессироваться в хозяине, трансформированном рекомбинантной молекулой ДНК. Например, экспрессия уриказы может быть контролируема любым промоторным/энхансерным элементом, известным в технологии. Промоторы, которые могут быть использованы для контроля экспрессии уриказы, включают, но не только, ранний промотор вируса SV40 (Bernoist and Chambon, 1981, Nature 290: 304-310), промотор, содержащийся в 3'-длинном концевом повторе вируса саркомы Рауса (Yamamoto, et al., 1980, Cell 22: 787-797), промотор тимидин киназы вируса герпеса (Wagner et al., 1981, Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 78: 144-1445), регуляторную область гена металлотионина (Brinster et al., 1982, Nature 296: 39-42); прокариотические экспрессионные векторы, такие как промотор β-лактамазы (Villa-Kamaroff, et al., 1978, Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 75:3727-3731), промотор tac (DeBoer, et al., 1983, Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 80: 21-25) и osmB промотор. В отдельном варианте осуществления нуклеиновая кислота, содержащая последовательность нуклеотидов, кодирующую уриказу, оперативно связана с гетерологичным промотором.

Когда данная рекомбинантная молекула ДНК, содержащая кодирующую последовательность нуклеотидов приготовлена и выделена, несколько известных в технологии методов могут быть использованы для ее размножения. Когда имеются налаженные система-хозяин и условия для роста, рекомбинантный экспрессионный вектор может быть размножен и приготовлен количественно. Как объяснено ранее, экспрессионные векторы, которые могут быть использованы, включают, но не только, следующие векторы или их производные: вирусы человека и животных, такие как вирусы коровьей оспы; вирусы насекомых, такие как бакуловирус; дрожжевые векторы; векторы бактериофагов (например, лямбда), и плазмидные и космидные ДНК-векторы, а также другие.

В добавление, могут быть выбраны линии клеток-хозяев, модулирующие экспрессию введенной последовательности, или модифицирующие и осуществляющие созревание продукта гена специфическим желательным образом. Экспрессия с определенных промоторов может быть увеличена в присутствии определенных добавок; так, можно контролировать экспрессию белка-уриказы, полученного с помощью генной инженерии. Более того, различные клетки-хозяева имеют характеристики и специфические механизмы для трансляционного и пост-трансляционного созревания и модификаций (например, гликозилирования, расщепления) белков. Подходящие линии клеток или систем-хозяев могут быть выбраны для обеспечения желаемых модификаций и созревания чужеродного экспрессируемого белка. Различные векторы/экспрессионные системы-хозяева могут по-разному влиять на реакции созревания, такие как протеолитическое расщепление.

В отдельном варианте осуществления изобретения экспрессия уриказы в E.coli предпочтительно осуществляется с использованием вектора, содержащего osmB промотор.

ПРИМЕРЫ

Пример 1. Создание гена и экспрессионной плазмиды для экспрессии уриказы

Рекомбинантную уриказу (урат-оксидазу) свиньи, Pig-KS-ΔN (усеченный с N-конца белок уриказы свиньи с замененными в положениях 291 и 301 аминокислотами на лизин и серин соответственно) экспрессировали в штамме E.coli K-12 W3110 F- Результатом создания серии плазмид была конструкция pOUR-P-ΔN-ks-1, с которой осуществлялась эффективная экспрессия уриказы при трансформации в клетки-хозяева E.coli.

Выделение и субклонирование кДНК уриказы из печени свиньи и бабуина

кДНК уриказы была приготовлена из печени свиньи и бабуина посредством выделения и субклонирования соответствующей РНК. Тотальная клеточная РНК была экстрагирована из печени свиньи и бабуина (Erlrich, H.A. (1989). PCR technology; Principles and Application for DNA Amplification; Sambrook, J., et al. (1989). Molecular cloning: A Laboratory Manual, 2^nd edition; Ausubel, F.M. et al. (1998). Current protocols in molecular Biology), после чего была использована для обратной транскрипции с использованием First-Strand cDNA Synthesis Kit (Pharmacia Biotech). ПЦР-амплификацию проводили с использованием Taq ДНК-полимеразы (Gibco BRL, Life Technologies).

Последовательности синтетических олигонуклеотидов-праймеров, использованные для ПЦР-амплификации urate oxidase (уриказы) свиньи и бабуина, приведены в Таблице 1.

Таблица 1
Праймеры для АЦР-амплификации кДНК уриказы
Уриказа из печени свиньи:
смысловой 5' gcgcgaattccATGGCTCATTACCGTAATGACTACA 3'
(SEQ ID NO. 1)
антисмысловой 5' gcgctctagaagcttccatggTCACAGCCTTGAAGTCAGC 3'
(SEQ ID NO. 2)
Уриказа из печени бабуина (D3H)
смысловой 5' gcgcgaattccATGGCCCACTACCATAACAACTAT 3'
(SEQ ID NO. 3)
антисмысловой 5' gcgcccatggtctagaTCACAGTCTTGAAGACAACTTCCT 3'
(SEQ ID NO. 4)

Последовательности нуклеотидов, выделенные строчными буквами в Таблице 1, являются введенными в последовательности праймеров рестрикционными сайтами: для рестриктаз EcoRI и NcoI (смысловой для свиньи и бабуина) и NcoI, HindIII и XbaI (антисмысловой для свиньи), XbaI и NcoI (антисмысловой для бабуина). Для смыслового праймера для бабуина, третий кодон GAC (кодирующий аспартат) в последовательности уриказы бабуина, был заменен на CAC (кодирующий гистидин) - кодон, присутствующий в данном положении в кодирующей последовательности псевдогена урат-оксидазы человека. Рекомбинантная конструкция уриказы бабуина, полученная с помощью этих праймеров, получила название D3H уриказа бабуина.

ПЦР-продукт, полученный для уриказы свиньи, был расщеплен с EcoRI и HindIII и клонирован в pUC18 для производства pUC18 - Pig Uricase. ПЦР-продукт, полученный для D3H уриказы бабуина, был клонирован непосредственно в pCR™II-вектор, используя TA Cloning™ (Invitrogen, Carlsbad, CA), для создания вектора pCR™II - D3H Baboon Uricase.

Лигированная ДНК была использована для трансформации штамма E.coli XL1-Blue (Stratagene, La Jolla, CA). Плазмидная ДНК, содержащая клонированную кДНК уриказы, была получена, клоны, содержащие опубликованную последовательность ДНК, кодирующую уриказу (кроме D3H замены в уриказе бабуина, указанной в таблице 1), были отобраны и выделены. В отобранном клоне pCR™II-D3H Baboon Uricase последовательности pCR™II оказались рядом со стоп-кодоном уриказы, получающимся при делеции последовательностей, введенным методом ПЦР. Как следствие, рестрикционные сайты XbaI и NcoI на 3'-конце были элиминированы, что сделало возможным прямое клонирование с использованием NcoI на 5'-конце ПЦР-продукта и BamHI, присутствующего в pCR™II векторе.

Субклонирование кДНК уриказы в экспрессионный вектор pET

Субклонирование уриказы бабуина

D3H кДНК бабуина, содержащая полноразмерную последовательность, кодирующую уриказу, была введена в экспрессионный вектор pET-3d (Novagen, Madison, WI). Конструкция pCR™II-D3H Baboon Uricase была расщеплена рестриктазами NcoI и BamHI, после чего был выделен продукт длиной 960 пар нуклеотидов. Экспрессионная плазмида pET-3d была расщеплена рестриктазами NcoI и BamHI, после чего был выделен фрагмент длиной 4600 пар оснований. Два фрагмента были лигированы для получения конструкции pET-3d-D3H-Baboon.

Субклонирование химерной уриказы свиньи-бабуина

Химерная уриказа свиньи-бабуина (PBC) была получена для достижения более высокого уровня экспрессии, стабильности и активности рекомбинантного гена. Конструкция PBC была получена посредством выделения фрагмента NcoI-ApaI длиной 4936 пар оснований из клона pET-3d-D3H-Baboon и лигирования его с выделенным фрагментом NcoI-ApaI длиной 624 пары оснований из pUC18-Pig Uricase, что привело к получению конструкции pET-3d-PBC. кДНК уриказы PBC состоит из кодонов 1-225 уриказы свиньи, соединенных в одной рамке с кодонами 226-304 уриказы бабуина.

Субклонирование уриказы Pig-KS

Уриказа Pig-KS была сконструирована для добавления одного остатка лизина, который может обеспечить дополнительный сайт конъюгации с ПЭГ. KS относится к введению аминокислоты лизина в последовательность уриказы свиньи в позицию 291, на место аргинина (R291K). В добавление, треонин в позиции 301 был замещен серином (T301S). Плазмида, несущая уриказу PigKS, была сконструирована из фрагмента NcoI-NdeI длиной 4696 пар оснований, выделенного из pET-3d-D3H-Baboon, лигированного с фрагментом NcoI-NdeI длиной 864 пары оснований, выделенного из pUC18 - Pig Uricase, что привело к образованию pET-3d-PigKS. Полученная последовательность уриказы PigKS состоит из кодонов 1-288 уриказы свиньи, соединенных в одной рамке с кодонами 289-304 уриказы бабуина.

Субклонирование последовательности уриказы под контролем промотора osmB

Ген уриказы был субклонирован в экспрессионный вектор, содержащий промотор osmB (согласно указаниям в Патенте Соединенных Штатов №5795776, включенном сюда во всем объеме посредством ссылки). Этот вектор позволяет индуцировать экспрессию белка в ответ на осмотическое давление или истощения среды. Экспрессионная плазмида pMFOA-18 содержала промотор osmB, последовательность связывания рибосомой (rbs) и последовательность терминатора транскрипции (ter). Она несет также ген устойчивости к ампициллину (AmpR) и экспрессирует человеческую рекомбинантную ацетилхолинэстеразу (AChE).

Субклонирование D3H уриказы бабуина

Плазмида pMFOA-18 была расщеплена рестриктазами NcoI и BamHI, после чего был выделен большой фрагмент. Конструкция pET-3d-D3H-Baboon была расщеплена рестриктазами NcoI и BamHI, после чего был выделен фрагмент длиной 960 пар оснований, включающий ген D3H уриказы бабуина. Два фрагмента были лигированы для получения pMFOU18.

Экспрессионная плазмида pMFXT113 содержала промотор osmB, rbs (deo опреон E.coli), ter (E.coli TrypA), рекомбинантный полипептид ингибитор-фактор Xa (FxaI), а также она несет ген устойчивости к тетрациклину (TetR). Ген уриказы бабуина был встроен в эту плазмиду вместо гена устойчивости к антибиотику. Плазмида pMFOU18 была рестрицирована NcoI, достроена, затем рестрицирована с XhoI, после чего был выделен фрагмент длиной 1030 пар оснований. Плазмида pMFXT133 была рестрицирована NdeI, достроена, затем рестрицирована XhoI, после чего был выделен большой фрагмент. Два фрагмента были лигированы для создания вектора pURBA16, экспрессирующего уриказу бабуина.

Субклонирование химерной уриказы свиньи бабуина

Плазмида pUBRA16 была рестрицирована ApaI и AlwNI, после чего был выделен фрагмент длиной 2320 пар оснований. Плазмида pMFXT133 была рестрицирована NdeI, достроена, затем рестрицирована AlwNI, после чего был выделен фрагме