Способ изготовления r-бруцеллезного эритроцитарного антигена для реакции непрямой гемагглютинации (рнга)
Изобретение относится к области ветеринарии, а именно к способам получения R-бруцеллезного эритроцитарного антигена для реакции непрямой гемагглютинации (РНГА). Способ изготовления R-бруцеллезного эритроцитарного антигена для реакции непрямой гемагглютинации (РНГА) включает изготовление формалинизированных эритроцитов барана, сенсибилизацию их сенситином, полученным выращиванием бактериальной массы бруцелл, смыв ее гипертоническим раствором хлорида натрия, инактивацию, экстрагирование и отделение сенситина центрифугированием. При этом антиген извлекают из штамма В.abortus 16/4 воздействуя на бактериальные клетки 0,5% концентрацией додецилсульфата натрия при температуре 68-70°С в течение 60 минут. Изобретение позволяет получить диагностический препарат высокой эффективности для диагностики бруцеллеза животных. 5 табл., 1 пр.
Реферат
Изобретение относится к области микробиологии, а именно к способам изготовления диагностических препаратов, применяемых при серологических исследованиях в ветеринарии и может быть использовано в медицине.
Известен способ приготовления антигена для дифференциальной серологической диагностики бруцеллеза у животных, включающий получение бактериальной массы штамма В.abortus R-1096 и инактивацию ее путем гамма-облучения [SU 946039 А, 05.02.79 г.]. Однако антиген, полученный таким способом, используется только для постановки реакции агглютинации и реакции связывания комплемента.
Известен также способ получения эритроцитарного антигена для реакции непрямой гемагглютинации при бруцеллезе, включающий приготовление формалинизированных эритроцитов барана, их обработку додецилсульфатом натрия в 1% концентрации при 50-60°С в течение 30 минут, с последующей сенсибилизацией сенситином, полученным выращиванием бактериальной массы бруцелл штамма В.abortus 19, смывом ее гипертоническим раствором хлорида натрия, инактивацией, экстрагированием и отделением сенситина центрифугированием [RU 2283498 С1, 22.02.2005 г.].
Данный способ получения бруцеллезного антигена для РНГА при бруцеллезе не позволяет получить антиген для выявления в сыворотке крови R-гемагглютининов, т.к. для его изготовления используют штамм бруцелл в S-форме.
Техническим результатом изобретения является получение активного и специфичного R-бруцеллезного эритроцитарного антигена для выявления в сыворотке крови R-бруцеллезных антител в реакции непрямой гемагглютинации (РНГА).
Технический результат способа изготовления R-бруцеллезного эритроцитарного антигена для реакции непрямой гемагглютинации достигается приготовлением формалинизированных эритроцитов барана, с последующей их сенсибилизацией сенситином, полученным выращиванием бактериальной массы В.abortus 16/4, смывом ее гипертоническим раствором хлорида натрия, инактивацию, экстрагирование, отделение сенситина центрифугированием, воздействием на бактериальные клетки 0,5% концентрацией додецилсульфата натрия при температуре 68-70°С в течение 60 минут.
Способ осуществления. Трехсуточную агаровую культуру бруцелл вакцинного штамма В.abortus 16/4 смывают 12% раствором хлорида натрия, фильтруют и подвергают автоклавированию при 1 атм. (120°С) в течение 20-30 минут, доводят концентрацию бруцелл до 40-50 млрд м.к. в 1 мл 12% раствором NaCl. К бактериальной взвеси добавляют 0,5% додецилсульфата натрия, после чего ее нагревают в водяной бане при температуре 68-70°С в течение 60 минут, при периодическом перемешивании. Взвесь декантируют путем центрифугирования при 8-10 тыс об/мин в течение 60 минут, полученный экстракт используют для сенсибилизации формалинизированных эритроцитов барана.
Формалинизацию эритроцитов барана проводят по методу R.Weinbach (1958), при этом концентрация формальдегида в процессе обработки эритроцитов составляет 1,5%, соотношение фиксатора и эритроцитов 0,375:1. Полученную взвесь эритроцитов с формальдегидом переносят в термостат и формалинизируют при температуре 37-38°С в течение 18-20 часов. После окончания формалинизации эритроциты отмывают от избытка формалина 3 раза 10-кратным объемом физиологического раствора на центрифуге при 1000-1500 об/мин в течение 10-15 минут (Каральник Б.Н. Эритроцитарные диагностикумы. - М., Медицина. - 1976. - 164 с.).
В таблице 1 представлены результаты воздействия на бактериальную массу с целью извлечения сенситина разных концентраций додецилсульфата натрия.
Таблица 1 | ||||
Влияние концентрации додецилсульфата натрия на активность и пецифичность R-бруцеллезного эритроцитарного антигена | ||||
Концентрация додецилсульф ата натрия | Количество антигена на 1 мл 5,0% взвеси эритроцитов | Титр РИГА с R-бруцеллезной сывороткой | Негативная сыворотка крупного рогатого скота с 1:50 | Контроль с физиологическим раствором |
0,1% | 0,25 | - | - | - |
0,5 | - | - | - | |
1 | - | - | - | |
2 | - | - | - | |
3 | - | - | - | |
0,25% | 0,25 | - | - | - |
0,5 | - | - | - | |
1 | 1:100++++ | - | - | |
2 | 1:400++++ | - | - | |
3 | 1:800++++ | - | - | |
0,5% | 0,25 | 1:1600++++ | - | - |
0,5 | 1:3200++++ | - | - | |
1 | 1:6400++++ | - | - | |
2 | 1:12800++++ | 1:100++++ | - | |
3 | 1:25600++++ | 1:200++++ | ++++ | |
1,0% | 0,25 | 1:25600++++ | 1:400++++ | ++++ |
0,5 | 1:25600++++ | 1:400++++ | ++++ | |
1 | 1:25600++++ | 1:400++++ | ++++ | |
2 | 1:25600++++ | 1:400++++ | ++++ | |
3 | 1:25600++++ | 1:400++++ | ++++ |
Анализ данных таблицы 1 показывает, что оптимальной концентрацией детергента при изготовлении R-антигена является 0,5% додецилсульфата натрия, при этом специфичный эритроцитарный антиген с заданной активностью не ниже 1:3200 при титрации с R-бруцеллезной сывороткой можно получить при соотношении формалинизированных эритроцитов и сенситина 1:0,5. При применении 0,25% концентрации додецилсульфата в процессе извлечения сенситина диагностикум не обладает достаточной активностью. При использовании додецилсульфата натрия в концентрации 1,0% эритроцитарный диагностикум становится неспецифичным, получены положительные результаты с негативной сывороткой крупного рогатого скота в разведении 1:50 и выше и с физиологическим раствором.
Сенсибилизацию формалинизированных эритроцитов проводят оптимальной дозой сенситина, которую определяют путем титрации его с использованием R-бруцеллезной агглютинирующей сыворотки. При титрации сенситина для сенсибилизации эритроцитов к 1 мл 5,0% взвеси эритроцитов добавляют его в количествах 0,25; 0,5; 1,0; 1,5; 2; 3,0 мл. Результаты испытания специфичности R-бруцеллезного эритроцитарного антигена представлены в таблице 2.
Таблица 2 | |||
Результат испытания специфичности R-бруцеллезного эритроцитарного антигена | |||
Сыворотки крови, подвергнутые исследованию | Количество исследуемых проб | Разведение сыворотки крови | Результат исследования |
невакцинированный против бруцеллеза крупный рогатый скот из благополучных по бруцеллезу хозяйств | 505 | 1:50 | отрицательно |
здоровые кролики | 20 | 1:10 | отрицательно |
здоровые морские свинки | 26 | 1:10 | отрицательно |
кролики, гипериммунизированные вакцинным штаммом B.abortus 104 M(S-форма) | 10 | 1:10 | отрицательно |
крупный рогатый скот больной бруцеллезом из неблагополучных по бруцеллезу хозяйств | 79 | 1:50 | отрицательно |
Из представленных в таблице 2 данных следует, что предложенный способ позволяет получить специфичный R-бруцеллезный эритроцитарный антиген, т.к. позволяет получить отрицательные результаты РИГА у здоровых и сенсибилизированным бруцеллезным S-антигеном животных. Результаты испытания активности R-бруцеллезного антигена отражены в таблице 3.
Таблица 3 | ||||
Результаты испытания активности R-бруцеллезного эритроцитарного антигена | ||||
№ п/п | Объект исследования | Результаты исследования | ||
РНГА | РА с единым антигеном (титр ME) | РСК с единым антигеном (разведение сыворотки крови) | ||
1 | сыворотки крови кроликов, зараженных В.abortus 54-70 (R-форма) | 1:2560 | - | - |
2 | 1:2560 | - | - | |
3 | 1:2560 | - | - | |
4 | 1:3200 | - | - | |
5 | 1:200 | - | - | |
6 | 1:1600 | - | - | |
7 | 1:1600 | - | - | |
8 | 1:3200 | - | - | |
9 | 1:800 | - | - | |
10 | 1:100 | - | - | |
1 | сыворотки крови крупного рогатого скота, иммунизированного вакциной из штамма В.abortus 82 (R S -форма) | 1:200 | - | - |
2 | 1:400 | - | - | |
3 | 1:1600 | 50МЕ+++ | - | |
4 | 1:800 | - | - | |
5 | 1:400 | - | - | |
6 | 1:3200 | - | 1:10++ | |
7 | 1:800 | - | - | |
8 | 1:400 | - | - | |
9 | 1:200 | - | - | |
10 | 1:3200 | 100МЕ++ | - |
Из таблицы 3 следует, что R-бруцеллезный эритроцитарный антиген обладает активностью, так гемагглютинины в сыворотке крови кроликов, зараженных R-формой бруцелл, содержались в титре от 1:100 до 1:3200, в сыворотке крови крупного рогатого скота, иммунизированного вакциной из штамма В.abortus 82 от 1:200 до 1:3200.
Определение чувствительности R-бруцеллезного эритроцитарного антигена проводили при исследовании сыворотки крови крупного рогатого скота, привитого вакциной из штамма В.abortus 82, в благополучных и неблагополучных по бруцеллезу хозяйствах (таб. 4, 5).
Таблица 4 | ||||||
Результаты серологических исследований сыворотки крови крупного рогатого скота, привитого вакциной из штамма В.abortus 82, в благополучных по бруцеллезу хозяйствах | ||||||
Срок исследования (сутки) | № хозяйства | Исследовано проб | Реагировало в РНГА с R-антигеном | РА+РСК с единым антигеном | ||
абс. | % | абс. | % | |||
30 | 1 | 49 | 34 | 69,4 | 3 | 6,1 |
2 | 198 | 171 | 86,4 | 43 | 21,7 | |
60 | 1 | 196 | 106 | 54,1 | 6 | 3,1 |
90 | 1 | 189 | 130 | 68,8 | 11 | 5,8 |
120 | 1 | 199 | 60 | 30,1 | 3 | 1,5 |
180 | 1 | 198 | 30 | 15,2 | 6 | 3 |
210 | 1 | 191 | 22 | 11,5 | 6 | 3,1 |
ИТОГО: | 1220 | 553 | 45,3 | 78 | 6,4 |
Обследование благополучного по бруцеллезу крупного рогатого скота, иммунизированного вакциной из штамма В.abortus 82, показало, что с помощью R-бруцеллезного эритроцитарного антигена на протяжении 210 суток удалось обнаружить от 11,5 до 86,4% реагирующих животных.
Таблица 5 | |||||
Результаты серологических исследований сыворотки крови крупного рогатого скота, привитого вакциной из штамма 82, в неблагополучных по бруцеллезу стадах | |||||
Срок исследования после вакцинации (сутки) | Количество голов | Количество животных, реагирующих в: | |||
РА+РСК+РНГА+РИД с S-антигенами в высоких титрах | РНГА с R-антигеном | ||||
абс. | % | абс. | % | ||
60 | 539 | 31 | 5,8 | 25 | 80,6 |
90 | 504 | 16 | 3,2 | 15 | 93,7 |
120 | 471 | 7 | 1,5 | 7 | 100,0 |
Итого: | 1514 | 54 | 3,6 | 47 | 87,0 |
Данные таблицы 5 показывают, что R-бруцеллезные антитела в сыворотке крови больных бруцеллезом животных, привитых вакциной из штамма В.abortus 82 (SR-форма), можно диагностировать с помощью R-бруцеллезного эритроцитарного антигена, изготовленного данным способом, в разные сроки после иммунизации животных.
Предлагаемый R-бруцеллезный эритроцитарный антиген обладает специфичностью и чувствительностью, его используют в лаборатории ГНУ ВНИИБТЖ при проведении контроля иммунного ответа у крупного рогатого скота, иммунизированного противобруцеллезными вакцинами, а также при оздоровлении неблагополучных по бруцеллезу хозяйств с целью сохранения от необоснованного убоя животных с поствакцинальными реакциями.
Способ изготовления R-бруцеллезного эритроцитарного антигена для реакции непрямой гемагглютинации (РНГА), включающий приготовление формалинизированных эритроцитов барана, сенсибилизацию их сенситином, полученным выращиванием бактериальной массы бруцелл, смыв ее гипертоническим раствором хлорида натрия, инактивацию, экстрагирование и отделение сенситина центрифугированием, отличающийся тем, что антиген извлекают из R-штамма В.abortus 16/4, воздействуя на бактериальные клетки 0,5% концентрацией додецилсульфата натрия при температуре 68-70°С в течение 60 мин.