Способ оценки зимостойкости плодовых растений
Способ относится к области сельского хозяйства, в частности к плодоводству и селекции. Способ включает промораживание однолетних побегов в период покоя в камере искусственного климата. При этом оценку поврежденных побегов производят не визуально, а по величине максимального квантового выхода фотохимических реакций фотосистемы II и относительной скорости транспорта электронов фотосистемой II в тканях камбия и почек, которые определяют PAM-флуориметром. Регистрируют минимальный уровень флуоресценции и изменения этого показателя под действием актиничного света плотностью 190 µmol/(m2s) и после воздействия на объект импульса света высокой интенсивности (10000 µmol/(m2s), 450 нм). Способ позволяет ускорить оценку повреждений плодовых растений морозом. 2 табл., 2 пр.
Реферат
Использование: сельское хозяйство, плодоводство, селекция плодовых растений.
Сущность изобретения: в основе способа лежит определение функциональной активности тканей камбия и почек однолетних побегов плодовых растений в период покоя, оцениваемой по показателям индукции флуоресценции хлорофилла. При этом регистрируется максимальный квантовый выход фотохимических реакций фотосистемы II (Fv/Fm) и относительная скорость транспорта электронов фотосистемой II (ETR - Electron Transport Rate).
Заявляемое изобретение относится к селекции плодовых растений и может быть использовано для ускоренной оценки исходных форм и гибридного фонда по уровню морозоустойчивости.
Повреждающие факторы зимнего периода наносят садоводству огромный экономический ущерб, значительно снижая продуктивность и долговечность насаждений. В полевых условиях затруднительно в короткий срок получить информацию об устойчивости сорта к неблагоприятным условиям перезимовки в связи с относительной редкостью суровых зим, сложностью установления времени повреждения, множественностью факторов морозного повреждения (Тюрина, Гоголева, 1978; Тюрина, 1993; Трунова, Резвякова, 1995; Кичина, 1999).
Существует целый ряд способов диагностики зимостойкости по косвенным признакам: низкочастотному сопротивлению побегов (импедансу), содержанию в коре антоцианов, различию в экстракции электролитов из листьев и побегов после воздействия раствором этанола, соотношению низко- и высокомолекулярных фракций белка, гистохимическому анализу суммарного количества запасного крахмала, по связи между содержанием свободной и связанной форм РНК в коре однолетнего прироста и средней величиной суточной температуры воздуха и др. (Соловьева, 1967; Иванченко, Фисенко, Мигин, 1979; Суздальцева, 1983; Иванченко, 1985; Денисов, 1986; Кудрявкин и др., 1987; Резвякова, Джигадло, 1994 и др.). Однако на практике косвенные методы оценки зимостойкости признания не получили.
Наиболее близким по своей сущности к заявленному изобретению является метод прямого лабораторного промораживания и последующей глазомерной оценки повреждений однолетних побегов, которая позволяет значительно ускорить характеристику зимостойкости сортов по основным компонентам устойчивости к низким температурам на основе моделирования повреждающих факторов для конкретной климатической зоны (Тюрина, Гоголева, 1978). Отмечается надежность этого метода, сведения, полученные в контролируемых условиях, достаточно близко совпадают с данными по их полевой устойчивости.
Однако указанный метод имеет и ряд недостатков. Так, результаты степени морозостойкости тканей в баллах, полученные различными исследователями, могут существенно различаться, т.е. присутствует фактор субъективности глазомерной оценки. При этом по методике необходимо провести оценку пяти побегов в трех повторностях каждый, что повышает трудоемкость исследований и требует значительных затрат времени.
Целью изобретения является разработка способа автоматизации и ускорения оценки повреждений плодовых растений морозом при искусственном промораживании и в естественных условиях.
Цель достигается за счет определения интенсивности флуоресценции хлорофилла в период перезимовки в тканях камбия и почек однолетних побегов, повредившихся в естественных условиях или после промораживания в морозильной камере. Измерения производятся РАМ-флуориметром после применения импульса света высокой интенсивности (10000 µmol/(m2s), 450 нм). Для регистрации минимального уровня флуоресценции (Fo) побеги освещают модулированным с низкой частотой (5 Гц) измерительным светом (450 нм) низкой интенсивности. Регистрируются максимальный квантовый выход фотохимических реакций фотосистемы II (Fv/Fm) и скорость транспорта электронов фотосистемой II (ETR). При этом прибором оцениваются изменения показателей флуоресценции хлорофилла под действием актиничного света плотностью 190 µmol/(m2s). Установлена высокая корреляционная зависимость между уровнем указанных показателей и степенью зимостойкости растения - у более устойчивых к морозу растений отмечается более высокий уровень максимального квантового выхода и скорость транспорта электронов.
Пример 1. Однолетние побеги яблони были проморожены в низкотемпературной установке PC 280/75 (Фригера) -38°C в течение 12 часов согласно методическим рекомендациям, разработанным М.М.Тюриной и Г.А.Гоголевой (1978). У промороженных побегов в камбии и почках после оттаивания были определены уровень максимального квантового выхода фотохимических реакций фотосистемы II (Fv/Fm) и скорость транспорта электронов фотосистемой II (ETR). Отмечена высокая корреляция между показателями скорости транспорта электронов фотосистемой II (ETR) и морозостойкостью растений (табл.1). Наиболее высокими значениями данного показателя характеризовались формы, наименее пострадавшие от мороза.
Пример 2. Однолетние побеги груши в естественных условиях перенесли понижение температуры -33°C. После оттаивания у поврежденных морозом побегов в камбии и почках измеряли уровень максимального квантового выхода фотохимических реакций фотосистемы II (Fv/Fm) и скорость транспорта электронов фотосистемы II (ETR). Отмечена высокая корреляция между показателями скорости транспорта электронов фотосистемой II (ETR) и морозостойкостью растений (табл.2). Наиболее высокими значениями данного показателя характеризовались формы, наименее пострадавшие от мороза.
Представленные результаты исследований доказывают, что предлагаемый способ позволяет автоматизировать и ускорить оценку повреждений плодовых растений морозом как при искусственном промораживании, так и в естественных условиях после суровых зим.
Литература
1. АС СССР, кл. A01G 7/00 A01H 1/04. Способ диагностирования зимостойкости генотипов яблони. / Иванченко Г.М., Фисенко Л.И., Мигин К.В. - №697095, заявл. 18.10.77. №2535781, опубл. 15.11.79.
2. Денисов В.Ф. Использование нового метода прогнозирования морозоустойчивости растений при сортоизучении яблони. / В.Ф.Денисов // Бюл. науч. инф. ЦГЛ. - 1986. - №43. - С.39-43.
3. Кичина В.В. Селекция плодовых и ягодных культур на высокий уровень зимостойкости (Концепция, приемы, методы). - М, 1999. - 126 с.
4. Кудрявкин B.C. Комплексный лабораторный метод оценки морозостойкости яблони в селекционном процессе. / B.C.Кудрявкин, В.Г.Леонченко, В.А.Суздальцева и др. // Задачи и современные методы селекции плодовых и ягодных культур: Тез. докл. - Ереван, 1987. - С.39-42.
5. Резвякова С.В. Использование низкочастотного сопротивления для определения морозостойкости яблони. / В.Резвякова, Е.Н.Джигадло // Селекция и семеноводство. - 1994. - №2. - С.9-11.
6. Соловьева М.А. Зимостойкость плодовых культур при различных условиях выращивания. - М.: Колос, 1967. - 239 с.
7. Суздальцева В.А. Изучение белкового обмена при лабораторном промораживании у различных по зимостойкости генотипов яблони в начальный период зимовки. / В.А.Суздальцева // Бюл. науч. информ. ЦГЛ им. И.В.Мичурина. - Мичуринск, 1983. - Вып.40. - С.7-10.
8. Трунова В.А. Итоги работы лаборатории зимостойкости В.А. Трунова, С.В. Резвякова // Селекция и сорторазведение садовых культур. - Орел, 1995. - С.240-247.
9. Тюрина М.М. Научные основы селекции на зимостойкость. / М.М.Тюрина // Селекция на зимостойкость плодовых и ягодных культур: Материалы совещ. - М., 1993. - С.17-29.
10. Тюрина М.М. Ускоренная оценка зимостойкости плодовых и ягодных растений. / М.М.Тюрина, Г.А.Гоголева / Методические рекомендации. - М., 1978. - 38 с.
Таблица 1. Зависимость между степенью повреждения побегов яблони и скоростью электронного транспорта (ETR) при искусственном промораживании
Сорт | ETR, побеги, мкмоль/(м2с) | Степень повреждения в баллах | |||
камбий | древесина | почки | Среднее по тканям | ||
Делишес спур | од | 3,2 | 4,4 | 5,0 | 2,8 |
Аленушкино | 2,3 | 2,7 | 1,5 | 4,0 | 1,6 |
Кубань спур | 2,8 | 1,7 | 5,0 | 5,0 | 2,8 |
Синап орловский | 2,0 | 1,1 | 4,9 | 4,9 | 1,6 |
Гала | 2,6 | 1,1 | 4,1 | 4,9 | 2,6 |
Болотовское | 5,2 | 0,3 | 1,1 | 2,9 | 0,5 |
Антоновка | 6,6 | 0,0 | 1,7 | 0,2 | 0,5 |
Былина | 6,7 | 0,0 | 1,2 | 0,7 | 0,5 |
Бреберн | 8,0 | 0,0 | 3,5 | 1,6 | 1,9 |
Коэффициент корреляции между ETR и глазомерной оценкой | -0,888 | -0,551 | -0,899 | -0,653 |
Таблица 2. Зависимость между степенью повреждения в естественных условиях и скоростью электронного транспорта (ETR) побегов груши
Сорт | ETR, побеги, мкмоль/(м2с) | Степень повреждения в баллах | |||
камбий | древесина | почки | Среднее по тканям | ||
Яковлевская | 9,1 | 1 | 0 | 0,8 | 0,45 |
Северянка краснощекая | 5,08 | 2,7 | 0 | 2,5 | 1,2 |
Феерия | 6,64 | 3,1 | 1 | 1,8 | 1,38 |
Тема | 10,3 | 1,5 | 0 | 0,8 | 0,43 |
Нежность | 6,52 | 2,6 | 0 | 1,9 | 0,9 |
Первомайская | 3,64 | 3,5 | 0,9 | 1,1 | 1,45 |
Аллегро | 1,97 | 1,5 | 0,8 | 0,3 | 0,53 |
Ника | 7,325 | 1,3 | 0 | 1 | 0,5 |
Августовская роса | 7,033 | 1,3 | 1 | 0,3 | 0,45 |
Тихий Дон | 3,34 | 3,5 | 0 | 1,5 | 2,08 |
Памяти Яковлева | 3,73 | 1 | 1 | 1 | 0,65 |
Гера | 6,79 | 3,1 | 0,8 | 2 | 1,68 |
Коэффициент корреляции между ETR и глазомерной оценкой | -0,530 | -0,445 | -0,405 | -0,550 |
Способ оценки зимостойкости плодовых растений, включающий промораживание однолетних побегов в период покоя в камере искусственного климата, отличающийся тем, что оценку повреждений поврежденных побегов производят не визуально, а по величине максимального квантового выхода фотохимических реакций фотосистемы II и относительной скорости транспорта электронов фотосистемой II в тканях камбия и почек, которые определяют PAM-флуориметром, регистрируя минимальный уровень флуоресценции и изменения этого показателя под действием актиничного света плотностью 190 µmol/(m2s) и после воздействия на объект импульса света высокой интенсивности (10000 µmol/(m2s), 450 нм).