Способ стимуляции эритропоэза у эмбрионов кур в процессе инкубации яиц

Способ стимуляции эритропоэза у эмбрионов кур в процессе инкубации яиц

Реферат

Данное изобретение относится к сфере сельского хозяйства, в частности к птицеводству.

Известно, что дефицит в организме микроэлементов и аминокислот у птицы даже на стадии эмбриогенеза способен значительно снизить ее продуктивность, а также спровоцировать развитие многих заболеваний и, в крайних случаях, приводить к гибели. Помимо этого, различные стрессовые воздействия приводят к подавлению резистентности птицы уже на стадии инкубации, нанося значительный экономический ущерб птицеводческой отрасли. Проблема восполнения недостаточности питательных веществ и, в частности, незаменимых аминокислот и микроэлементов, а также профилактики стрессовых воздействий может быть решена путем дополнительного введения их в организм трансовариальным путем [3, 5]. В настоящее время изучено влияние препарата «Хелавит» на эмбриогенез сельскохозяйственной птицы [2], однако применение данного препарата вместе с аскорбиновой кислотой неизвестно.

Микроэлементный препарат «Хелавит» - это билигандный комплекс производного янтарной кислоты, образующего 2 пятичленных хелатных цикла с ионами металла, и аминокислоты (в том числе незаменимые), также образующей пятичленный хелатный цикл с ионами металлов. В своем составе «Хелавит» содержит такие микроэлементы, как Fe, Mn, Cu, Zn, Со, Se, I, а также аминокислоты глицин, аланин, валин, аспарагиновая кислота, глутаминовая кислота, лизин, цистин, треонин, триптофан [4]. Препарат устраняет дефицит микроэлементов, стимулирует эритропоэз, нормализует обмен веществ. Применение препарата стимулирует рост и развитие птицы, усиливает воспроизводительную способность. У птиц он повышает яйценоскость, увеличивает энергию роста, повышает сохранность молодняка птицы. Аскорбиновая кислота участвует в различных метаболических процессах в организме животных и растений. Биологическая роль аскорбиновой кислоты связана с участием в окислительно-восстановительных процессах клеточного дыхания. Она влияет на различные функции организма: проницаемость капилляров, рост и развитие костной ткани, повышает иммунобиологическую сопротивляемость к неблагоприятным воздействиям, стимулирует продукцию гормонов надпочечников, способствует регенерации тканей [1].

Необходимо отметить, что препарат «Хелавит» вместе с аскорбиновой кислотой никогда не применялся для профилактики стрессовых воздействий в птицеводстве, а также влияние их на куриный эмбрион не изучено.

Данный метод, взятый нами в качестве прототипа, заключался в том, что «Хелавит» применяли для обработки инкубационных яиц. Вывод цыплят при его применении повышался на 8,97% (p<0,01), а выводимость на 7,9% (p<0,01), однако полученные результаты были ниже, чем при использовании препарата «Хелавит» с аскорбиновой кислотой. Трансовариальная аэрозольная обработка инкубационных яиц раствором «Хелавита» и аскорбиновой кислоты осуществлялась двукратно: перед инкубацией и перед переводом в выводные шкафы. При этом вывод цыплят в опытной партии был выше на 10,11% (p<0,001), а выводимость яиц на 9,56% (p<0,001) по сравнению с контрольной группой.

Цель изобретения - стимуляция эмбриогенеза яичных кур, увеличение вывода кондиционных цыплят, профилактика стрессовых воздействий при инкубации, восполнение дефицита микроэлементов и аминокислот путем аэрозольной обработки яиц перед закладкой на инкубацию и перед переводом в выводные шкафы водным раствором «Хелавита» и аскорбиновой кислоты.

Способ осуществляется следующим образом.

На поверхность скорлупы за 3-4 часа до инкубации из пульверизатора наносят водный раствор «Хелавита» и аскорбиновой кислоты в концентрациях 0,1% и 0,01%, соответственно, и перед переводом в выводные шкафы наносят водный раствор «Хелавита» и аскорбиновой кислоты в концентрациях 3% и 0,3%, соответственно. Предварительно препараты растворяют и смешивают в дистиллированной воде при температуре 18-22°C.

Пример 1. Яйца кур кросса «Шейвер браун» получали от одного родительского стада, сортировали по 306 штук в каждую партию по принципу аналогов. На поверхность скорлупы наносили в виде аэрозоля раствор препаратов по вышеуказанной схеме. В качестве контрольной группы отбирали яйца этой же партии по принципу аналогов, которые обрабатывали по технологии, принятой в хозяйстве. Полученные данные представлены в таблице 1. Как видно из таблицы, вывод из опытной партии превышает контроль на 10,11%, а выводимость на 9,56%. Значительно снизились такие отходы инкубации, как «кровяные кольца» в 1,8 раз, «замершие» в 1,9 раз, «задохлики» в 2,3 раза.

Таблица 1
Показатели биологического контроля (n=544)
Партия	Неоплод, %	Кровяные кольца, %	Замершие, %	Задохлики, %	Слабые, %	Выводимость, %	±	Вывод, %	±
Контроль	6,43±1,05	6,25±1,04	5,51±0,98	4,60±0,90	1,47±0,52	80,94±1,68	-	75,74±1,84	-
Опыт	5,15±0,95	3,49±0,79*	2,94±0,72*	2,02±0,60*	0,55±0,32	90,50±1,26***	+9,56	85,85±1,49***	+10,11
Примечание: Здесь и далее * - p<0,05; ** - p<0,01; *** - p<0,001

Пример 2. У цыплят, выведенных из обработанных яиц (пример 1), была определена живая масса и масса внутренних органов в суточном возрасте (таблица 2). Из таблицы видно, что масса цыплят суточного возраста достоверно увеличилась на 5,5%, а также наметилась тенденция к увеличению массы внутренних органов.

Таблица 2
Анатомо-морфологические показатели цыплят в суточном возрасте (n=10)
Группа	Масса цыпленка, г	Масса остаточного желтка с желточным мешком, г	Масса печени, г	Масса мышечн. и железист. желудков, г	Масса сердца, г	Масса селезенки, г	Масса фабрициевой сумки, г
Контроль	40,1±0,244	5,74±0,117	1,15±0,023	3,13±0,021	0,29±0,014	0,016±0,001	0,060±0,002
Опыт	42,3±0,292***	5,63±0,091	1,20±0,029	3,22 1 0,0-	0,30±0,01	0,019±0,001	0,070±0,003

Пример 3. У цыплят, выведенных из обработанных яиц, в суточном возрасте при биохимическом исследовании сыворотки крови усыновлено: содержание железа в сыворотке крови цыплят опытной группы достоверно возросло на 26,1%, гематокрит на 8,9%, концентрация эритроцитов увеличилась на 4,9 %. Данные представлены в таблице 3.

Таблица 3
Некоторое гематологические показатели цыплят в суточном возрасте (n=5)
Группа	Fe, мкмоль/л	Гемоглобин, г/л	Гематокрит, %	Концентр. эритроцитов, 1012/л	СОЭ, мм/ч
Контроль	23,8±1,18	94,9±1,36	27,25±0,78	2,24±0,037	3,9±0,1
Опыт	30,0±1,14*	99,5±1,02	29,68±0,36	2,35±0,033*	3,5±0,2

Пример 4. Цыплята, выведенные из обработанных яиц (пример 1), выращивали в условиях того же хозяйства до 60-дневного возраста в клеточных батареях. Данные представлены в таблице 4. В опытной группе за весь исследуемый период сохранность молодняка увеличилась на 4%, соответственно по сравнению с контролем.

Таблица 4
Сохранность цыплят, % (n=100)
Группы цыплят	Контрольная	Опытная
Возраст в днях	1-10	падеж	3	2
сохр.	97±1,71	98±1,4
10-20	падеж	3	1
сохр.	97±1,71	99±0,99
20-30	падеж	2	1
сохр.	98±1,40	99±0,99
30-40	падеж	-	-
сохр.	100	100
40-50	падеж	-	-
сохр.	100	100
50-60	падеж	-	-
сохр.	100	100
Всего за 60 дней	падеж	8	4
сохр.	92±2,71	96±1,96

Литература

1. Берзиня, Н. Влияние повышенной дозы аскорбиновой кислоты на редокс-статус цыплят / Н. Берзиня, Н. Басова, М. Апсите, Г. Смирнова // Комбикорма. - М., - 2012, №3 - С.71-72.

2. Краснобаев, Ю.В. Обработка яиц мясных кур экологически безопасным препаратом хелавитом для стимуляции эмбрионального и постэмбрионального развития бройлеров: Дис. … канд. биол. наук. / Ю.В. Краснобаев // МГАВМиБ. - М., 2009. - 147 с.

3. Лохова, С. Хелатные соединения в комбикормах для бройлеров / Лохова С. // Животноводство России. - 2005. - №10. С.14.

4. Пат. RU 2277800 C1. Микроэлементный препарат для животных / Козлов Ю.М., Рыжков А.А. - заявка 2005102519/13, 03.02.2005. Опубл. 20.06.2006. Бюл. №17.

5. Пикалина, О.А. Белково-витаминно-минеральный концентрат на основе полножировой сои с хелатными соединениями в кормлении цыплят-бройлеров: Дис. канд. биол. наук с/х наук. / О.А. Пикалина; МГАВМиБ. - М., 2007, 129 с.

Способ стимуляции эритропоэза у эмбрионов кур в процессе инкубации яиц путем профилактики стрессовых воздействий, восполнение дефицита микроэлементов и аминокислот, повышения интенсивности вывода при высокой жизнеспособности молодняка в течение длительного периода постэмбрионального развития, осуществляется за счет того, что обработку яиц проводят двукратно, а именно перед закладкой в инкубатор из пульверизатора наносят водный раствор «Хелавита» и аскорбиновой кислоты в концентрациях 0,1% и 0,01%, соответственно, и перед переводом в выводные шкафы наносят водный раствор «Хелавита» и аскорбиновой кислоты в концентрациях 3% и 0,3%, соответственно.