Способ стимуляции роста и развития эмбрионов яичных кур путем йодированного трансовариального питания

Способ стимуляции роста и развития эмбрионов яичных кур путем йодированного трансовариального питания

Реферат

Данное изобретение относится к сфере сельского хозяйства, в частности к птицеводству (аэрозольное применение раствора «Кламина» перед инкубацией яиц).

Потребность в йоде у всех видов птиц небольшая, но значение этого элемента очень велико. Недостаток йода часто испытывают не только жители регионов, почва, вода которых бедны этим минералом, а также животные, птицы, и особо нуждаются в этом элементе растущие организмы. Большая часть йода находится в щитовидной железе, которая играет ведущую роль в живой системе, регулируя обмен веществ. Поступая в организм эмбриона кур, йод активно включается в гормоны щитовидной железы, обладающие широким спектром действия на многие обменные процессы. Тироксин (тетрайодтиронин) и трийодтиронин в раннем онтогенезе стимулируют рост, дифференцировку клеток и тканей. Эти гормоны стимулируют распад углеводов, жиров, белков, перенос аминокислот к рибосомам, синтез гликогена в печени, выведение воды. У цыплят интенсивность обменных процессов и роста положительно коррелирует с концентрацией тиреоидных гормонов [3]. Они оказывают специфическое (активация ядерного, митохондриального геномов клетки) и неспецифическое (активация энергетических процессов в митохондриях, что особенно важно для качественного роста и развития зародыша) влияние на процессы метаболизма различных тканей [8]. Тироксин и трийодтиронин проявляют выраженную антиоксидантную активность, выражающуюся в регуляции содержания антиоксидантов и перекисного окисления липидов. Калоригенное действие [3] тиреотропных гормонов осуществляется в митохондриях посредством генерации новой АТФ, что особенно необходимо эмбриону в критические периоды его развития.

Действие стрессов (овоскопирование, перенос в выводные шкафы и др.), которые начинают негативно воздействовать на организм эмбрионов кур уже в инкубаторе, препятствует полноценному развитию всех их тканей и органов. Все это обусловлено, прежде всего, развитием опаснейших реакций оксидативного стресса. В стресс-условиях увеличивается образование свободных радикалов во много раз, и антиоксидантная система просто не справляется с потоком активных форм кислорода. В результате происходят нарушения на уровне мембран клеток, приводящие к пагубным последствиям на уровне метаболизма клетки [9]. Учитывая тот факт, что эмбрионы наиболее уязвимы к действию патологических факторов, профилактику этих процессов необходимо осуществлять в онтогенезе как можно раньше. С этой целью в последнее время успешно применяют различные естественные метаболиты, а также их сочетания, в частности путем трансовариальной обработки яиц. По мнению многих исследователей [6, 10, 11] такое использование биологически активных веществ (БАВ) служит эффективным способом трасовариального питания, являющимся перспективным и эффективным направлением стимуляции роста и развития эмбрионов кур.

Профилактику оксидативного стресса можно осуществить путем однократной обработки инкубационных яиц (до закладки в инкубатор) раствором йодсодержащего аминокислотного препарата «Кламин». Применение этого препарата для обработки инкубационных яиц неизвестно. Он широко используется в медицине: в качестве противоопухолевого средства, корректора антиоксидантного статуса у больных (перенесших инфаркт миокарда), активатора системы антиоксидантной защиты организма. «Кламин» изготавливают из концентрата «Ламинария» омыленного с добавлением вспомогательных компонентов [2]. В основе действия морских водорослей лежит их уникальный биохимический состав, способный полностью покрыть потребности в экзогенных биологически активных веществах [4].

В условиях промышленного птицеводства широко используется восполнение йода в рационах у кур в постэмбриональный период, путем добавления в комбикорма йода в неорганической (йодистый калий и др.) и органической форме (йодказеин [5], мука бурых морских водорослей и др.), однако это не может ликвидировать действие стрессов, действующих на птицу в период инкубации, без трансовариального питания эмбриона. Петров (1958) показал, что при насыщении яйца неорганическим йодом (при введении в рацион несушек или инъекции раствора йода в воздушную камеру инкубируемых яиц) лишь незначительная его часть аккумулируется в щитовидной железе куриных эмбрионов и повышает ее гормонообразовательную функцию, что обусловливает некоторое ускорение развития эмбрионов и повышение выводимости цыплят [6]. Дитерлен-Льевр (1963) отмечает, что введение тироксина в первые дни развития эмбриона ускоряет его рост, и это ускорение сохраняется до конца инкубации [6]. «Кламин» является более безопасным и эффективным по сравнению с применением неорганических и гормональных препаратов на основе йода inovo, в связи с тем, что в первом случае - низкая усвояемость йода, а во втором - наличие побочных эффектов. Существуют сведения об использовании препарата «Монклавита-1» (водно-полимерной системы на основе йода), в качестве дезинфектанта инкубационных яиц, он не обладает эффектом стимуляции роста и развития эмбрионов кур [7]. Данные методы, взятые нами в качестве прототипов, заключаются в том, что «Рибав» применяли при обработке яиц яичного кросса. Вывод цыплят был выше на 7,74% (p<0,001) [1], однако полученные результаты ниже, чем при использовании «Кламина». Следует отметить, что органический йод в форме «Кламина» никогда не применялся для стимуляции роста и развития эмбрионов кур при трансовариальном питании в птицеводстве.

Аэрозольная обработка раствором «Кламина» инкубационных яиц яичных кур осуществляли однократно перед инкубацией. При этом вывод цыплят в опытной партии был выше на 9,19% (p<0,001), а выводимость яиц на 7,69% (p<0,001) по сравнению с контрольной группой.

Цель изобретения - стимуляция роста и развития эмбрионов кур яичного направления, уменьшение отходов инкубации, увеличение вывода кондиционных цыплят, активация антиоксидантной системы, профилактика оксидативного стресса, оптимизация обмена веществ, повышение уровня сохранности молодняка в постнатальный период путем трасовариальной аэрозольной обработки яиц перед закладкой на инкубацию водным раствором «Кламина».

Способ осуществляется следующим образом.

На поверхность продезинфицированной скорлупы инкубационных яиц за 3-4 часа до инкубации из пульверизатора наносят водный раствор «Кламина» в концентрации 0,001%. Предварительно препарат в форме таблетки измельчают, затем растворяют и смешивают в дистиллированной воде при температуре 18-22°C до полного растворения.

Пример 1. Яйца кур кросса «Шейвер 2000» получали от одного родительского стада, сортировали по 544 штуки в каждую партию по принципу аналогов, учитывая время снесения, сроков хранения и массы яиц. На поверхность скорлупы наносили в виде аэрозоля раствор препарата по вышеуказанной схеме. В качестве контрольной группы отбирали яйца этой же партии, которые не обрабатывали препаратом. Полученные данные представлены в таблице 1. Из таблицы видно, что вывод из опытной партии превышает контроль на 9,19%, а выводимость на 7,69%, также заметно достоверное снижение количества отходов инкубации, в частности замерших и задохликов в 1,9 раза.

Таблица 1
Показатели биоконтроля инкубации, (%) n=544
партия	Неоплод	Кровяные кольца	Замершие	Задохлики	Слабые	Выводимость	±Δ	Вывод	±Δ
Контрольная	8,82±1,22	1,47±0,52	5,33±0,96*	6,99±1,09*	1,10±0,45	83,67±1,56***		76,29±1,85***
Опытная	6,43±1,05	1,10±0,45	2,76±0,70	3,68±0,81	0,55±0,32	91,36±1,20	7,69	85,48±1,44	9,19
Примечание: Здесь и далее * - p<0,05; ** - p<0,01; *** - p<0,001

Пример 2. Закладка яиц кросса «Шейвер 2000» в инкубатор контрольной и опытной группы была произведена 18.03.2013 г. в 06:00, вывод цыплят установился 07.04.2013, вывод в опытной группе начался на 6 часов раньше, по сравнению с контролем. Очевидно, это было следствием более интенсивного развития эмбрионов в опытной партии, что отражено в таблице 2.

Таблица 2
Категории яиц по степени замыкания аллантоиса, %, n=100
ПартияКатегория яиц по аллантоису	1 категория	2 категория	3 категория
Контроль	27,0	44,0	29,0
Опыт	35,0	50,0	15,0

Пример 3. По потери яйцом влаги в процессе инкубации мы можем оценить развитие зародыша птицы. Данные таблицы 3 отражают, что процент «усушки»яиц опытной группы за период инкубации коррелирует с большей интенсивностью развития эмбриона, по сравнению с контрольной группой.

Таблица 3
Потери в весе яйца в процессе инкубации
Сутки инкубации	Показатель	Контроль	Опыт
4-е		3,2	3,4
8-е	6,4	6,6
12-е	% усушки	8,0	8,4
16-е		10,6	10,3
20-е	12,2	13,1

Пример 4. Цыплята, выведенные из обработанных яиц (пример 1), выращивали в условиях того же хозяйства до 60-ти дневного возраста в клеточных батареях. Данные представлены в таблице 4. В опытной группе за весь исследуемый период увеличилась сохранность молодняка на 2%, соответственно, по сравнению с контролем.

Таблица 4
Сохранность цыплят, %, n=100
Группы цыплят	Контрольная	Опытная
Возраст в днях	1-10	падеж	4	3
сохр.	96±1,96	97±1,71
10-20	падеж	2	1
сохр.	98±1,40	99±0,99
20-30	падеж	0	1
сохр.	100	99±0,99
30-40	падеж	0	0
сохр.	100	100
40-50	падеж	1	0
сохр.	99±0,99	100
50-60	падеж	0	0
сохр.	100	100
Всего за 60 дней	падеж	7	5
сохр.	93±2,55	95±2,18

Пример 5. При биохимическом исследовании сыворотки крови у цыплят, выведенных из яиц, обработанных раствором «Кламина», в суточном возрасте установлено: содержание общего белка в сыворотке крови цыплят опытной группы выше на 3,4%, уровень триглицеридов на 15%, α-амилазы на 4,6%, глюкозы в крови на 2,5%, количество тироксина увеличилось в 1,3 раза, по сравнению с биохимическими показателями контрольной группы. Данные представлены в таблице 5.

Таблица 5
Биохимические показатели крови. n=5
ГруппаПоказатель	Контрольная	Опытная
1	2	3
Общий белок, г/л	29,2±0,12	30,2±0,33*
Альбумин, г/л	12±1,06	14±0,61
Креатинин, мкмоль/л	23±1,61	29±1,87
Мочевая к-та, мкмоль/л	487±4,28	520±2,95**
Триглицериды, ммоль/л	0,60±0,01	0,69±0,02**
α-амилаза, Е/л	996±11,97	1042±10,06*
Глюкоза, ммоль/л	12,2±0,07	12,5±0,07*
Ca, ммоль/л (общий)	2,27±0,02	2,33±0,03
P, ммоль/л (неорганический)	1,69±0,02	1,66±0,01
Щелочная фосфатаза, Е/л	2306±9,47	2340±14,16
T4 общий мкг/дл	0,90±0,04	1,2±0,10*
T3 общий, нг/мл	1,0±0,03	1,2±0,10
ТТГ, мкМЕ/мл	0,010±0,0011	0,011±0,0011

Из таблицы 6 следует, что препарат активирует антиоксидантную систему цыплят, полученных из опытной группы, что выражается в увеличении показателя общей антиоксидантной активности (ОАА) на 25% и в снижении уровня вторичных и конечных продуктов перекисного окисления липидов: уровень малонового диальдегида (МДА) снизился на 14,3%, а основания Шиффа (ОШ) - в 1,7 раза, соответственно, по сравнению с контрольной группой. Все биохимические показатели находились в пределах референтных значений.

Таблица 6
Показатели перекисного окисления липидов (ПОЛ) и антиоксидантной защитной системы (АОЗС). n=5
Группа	ОАА, ммоль/л	ОШ, отн. ед/мл	МДА, мкмоль/л
Контрольная	1,68±0,02	0,5±0,04	4,2±0,10
Опыт	2,10±0,05***	0,3±0,05*	3,6±0,07**

Литература

1. Азарнова Т.О. Предынкубационная обработка яиц кросса «Хайсекс белый» препаратом Рибав и его влияние на эмбриогенез кур / Т.О. Азарнова // Птицефабрика - №12. - 2005. - С.35-36.

2. Беспалов В.Г. Применение биоактивных пищевых добавок «Кламин» и «Фитолон» для профилактики предопухолевых заболеваний молочной железы и органов желудочно-кишечного тракта / В.Г. Беспалов, В.А. Александров, Н.Ю. Бараш и др. // Методические рекомендации Минздрава РФ №97/118. - СПб: Эскулап, 1998. - 20 с.

3. Гудин В.А., Лысов В.Ф., Максимов В.И. Физиология и этология сельскохозяйственных птиц. - СПб.: Издательство «Лань», 2010. - 336 с.

4. Енина О.В. Физиологические аспекты антиэкотоксических эффектов препаратов на основе морских водорослей / О.В. Енина, С.Л. Совершаева, С.Ф. Макарова // Экология человека - №10. - 2007. - С.3-9.

5. Котомцев В. Генетический аппарат клеток цыплят-бройлеров под влиянием различных форм йода / В. Котомцев, Е.В. Шацких // Аграрный вестник Урала - №2 (56). - Екатеринбург. - 2009. - С.62-64.

6. Рольник В.В. Биология эмбрионального развития птиц. - Ленинград: Издательство «Наука», Ленингр. отд., 1968. - 366 с.

7. Саландаев К.В. Зоогигиеническая оценка применения препарата «Монклавит-1» в промышленном птицеводстве: автореф. дис. канд. биол. наук / К.В. Саландаев // ФГОУ ВПО «Санкт-Петербургская государственная академия ветеринарной медицины». - Санкт-Петербург. - 2007. - 22 с.

8. Сухрукова Т.А. Кардиальный эффект тиреоидных гормонов при иммобилизационном стрессе: автореф. дис. канд. мед. наук / Т.А. Сухрукова // Институт физиологии академии наук БССР. - Минск. - 1990. - 24 с.

9. Фисинин В.И. Современные методы борьбы со стрессами в птицеводстве / В.И. Фисинин, Т.Т. Папазян, П.Ф. Сурай // Животноводство сегодня - №3. - 2009. - С.62-67.

10. Dong X.Y. Effects of in ovo feeding of carbohydrates on hatchability, body weight, and energy status in domestic pigeons / X.Y. Dong, Y.J. Jiang, M.Q. Wanget al. // Poultry Science. - Vol.92. - 2013. - August. - №8. - P.2118-2123.

11. Ebrahimi M.R. Does preincubationalinovo injection of buffers or antioxidants improve the quality and hatchability in long-term stored eggs? / M.R. Ebrahimi, Y. JafariAhangari, M.J. Zamiriet al. // Poultry Science. - Vol.91. - 2012. - November. - №11. - P.2970-2976.

Способ стимуляции роста и развития эмбрионов яичных кур путем йодированного трансовариального питания, за счет снижения отходов инкубации, повышения вывода кондиционных цыплят, активации антиоксидантной системы организма, снижения продуктов перекисного окисления липидов, стабилизации процессов обмена веществ и повышения уровня сохранности молодняка в постнатальный период развития с помощью однократной обработки инкубационных яиц за 3-4 часа до инкубации, путем нанесения аэрозольным способом из пульверизатора на поверхность скорлупы яиц 0,001% раствора «Кламина».