Искусственная целлюлосома и ее применение для ферментативного расщепления эластичных субстратов

Искусственная целлюлосома и ее применение для ферментативного расщепления эластичных субстратов

Иллюстрации

Показать все

Реферат

Область техники, к которой относится изобретение

Настоящее изобретение предоставляет искусственную целлюлосому для ферментативного расщепления эластичных субстратов. В частности, настоящее изобретение предоставляет комплекс, содержащий основной каркас, имеющий по меньшей мере четыре участка связывания, способных связывать ферментные компоненты, вследствие чего по меньшей мере два участка связывания обладают по существу одинаковой специфичностью связывания; и по меньшей мере три разных ферментных компонента случайным образом связываются с по меньшей мере четырьмя участками связывания. Кроме того, настоящее изобретение относится к способу получения этого комплекса. Помимо этого, настоящее изобретение относится к применению указанных комплексов, а также разных ферментных компонентов для ферментативного расщепления эластичных субстратов, таких как целлюлоза.

Уровень техники

Целлюлоза является широко распространенным возобновляемым источником в области биотехнологии для изготовления различных видов биотоплива и структурных компонентов для химической промышленности. С наступлением приближающегося второго поколения Белой Биотехнологии (промышленной биотехнологии) целлюлоза из лигноцеллюлозной биомассы рассматривается в качестве самого крупного источника сахара, используемого для ферментации в промышленном масштабе. В настоящее время глюкоза для ферментации в промышленном масштабе производится главным образом из крахмала. Использование целлюлозы для производства сахара могло бы по меньшей мере удвоить урожай сельскохозяйственных продуктов в расчете на гектар. Кроме того, может быть увеличена площадь пахотных земель благодаря возможности выращивания большего разнообразия энергетических растений, в том числе таких, которые растут на обедненной почве, при неблагоприятных климатических условиях, а также в засушливых, влажных, холодных или обогащенных солями условиях.

Однако целлюлоза представляет собой прочный материал, устойчивый как к ферментативной, так и химико-физической деградации. Целлюлоза состоит из длинных волокон, составленных из линейных молекул, не имеющих ответвлений. С химической точки зрения она представляет собой в высокой степени гомогенный β-1,4-глюкан, который образует регулярные кристаллы формы Iα и Iβ¹. Однако эти кристаллы не являются идеально структурированными - через более или менее регулярные промежутки они прерываются аморфными областями. Следовательно, структурные особенности целлюлозы являются разнообразными, и необходимы ферменты, катализирующие расщепление различного типа.

Для деградации целлюлозных материалов в современном технологическом процессе ферментативного гидролиза целлюлозы необходимо использовать большое количество ферментов, как правило, грибкового происхождения. Как правило, эти ферменты нельзя использовать повторно. Гидролиз является довольно неэффективным в силу ряда причин: неоднородности материала, комплексообразования с гемицеллюлозой, пектином и лигнином, кристалличности целлюлозы, недоступности для ферментов из-за плотной упаковки в клеточных стенках и кристаллах и т.д. Это увеличивает количество различных видов ферментативной активности, необходимых для деградации, а также снижает скорость реакции и, следовательно, выход процесса. Скорость реакции может быть увеличена путем повышения температуры реакции, но платой за это является стабильность ферментов. Особенно сложным этот вопрос является для группы ферментов целлюлаз, которые по своей сути являются медленно реагирующими ферментами, которые работают с кристаллическим, т.е. нерастворимым субстратом. Разнообразие видов воздействия целлюлазы на целлюлозу объясняет многообразие различных ферментов, задействованных в комплексах целлюлаз: структурной гетерогенностью волокна целлюлозы (кристаллическое или аморфное, края или плоскости и т.д.), типом кристалла (Iα или Iβ), видом активности (процессивная экзоглюканаза или целлобиогидролаза, процессивная или непроцессивная эндоглюканаза (β-глюкозидаза). Для эффективной деградации кристаллического субстрата эти ферменты должны функционировать гармонично, несмотря на то, что все они расщепляют идентичные β-1,4-глюкозидные связи.

Коммерчески доступные целлюлазы, обычно используемые в Белой Биотехнологии, содержат смесь растворимых ферментов грибов. Наиболее успешными продуцентами наряду с другими являются Trichoderma longibrachiatum, Т. reesei (= Hypocrea jecorina), Т. viride (= Т. harzianum или Hypocrea atroviridis), Aspergillus niger, Phanerochaete chrysosporium, Chrysosporium lucknowense и Penicillium janthinellum. Некоторые смеси целлюлаз получают из двух микроорганизмов, например, из T. longibrachiatum и A. niger или из T. longibrachiatum и Т. reesei. Эти грибы продуцируют в культуральной жидкости большое количество экзопротеинов, в частности после интенсивного усовершенствования штаммов путем отбора и при помощи генной инженерии. Целлюлазы содержат эндоглюканазы, целлобиогидролазы (экзоглюканазы) и β-глюкозидазы, в некоторых штаммах - также несколько гемицеллюлаз.

Для этой новой области технологии прогнозируется резкое увеличение спроса на ферментативные составы для гидролиза устойчиво продуцируемых возобновляемых источников сахара, таких как лигноцеллюлозный материал. Другими областями использования целлюлаз являются в основном области, связанные с продуктами питания, текстилем, моющими средствами, бумажной промышленностью и добавками для кормов животным. Хотя целлюлазы уже широко представлены на рынке, в целом ожидается, что будущие области применения будут в основном относиться к производству целлюлаз для только что зарождающегося и потенциально гораздо более объемного рынка, связанного с расщеплением биомассы, в секторах химической биотехнологии, связанных и производством биотоплива и крупнотоннажным производством.

Однако различные структурные характеристики кристаллов целлюлозы и тот факт, что они по своей природе являются нерастворимыми, требуют наличия одновременно нескольких различных видов активности, таких как процессивные и непроцессивные целлюлазы. По отдельности эти ферменты обладают более низкой активностью; и только в сочетании они демонстрируют высокую активность. Эта разница между одним и множеством ферментов в смеси называется синергизмом, при котором активность смеси превышает сумму активностей ферментов, используемых по отдельности. Однако такую синергию можно наблюдать у ферментов грибов в смеси, в которой растворены единичные ферменты, не состоящие в “комплексе”, т.е. упакованные вместе в результате адсорбции, или в полипептиде. Синергия между растворимыми единичными ферментами исключает наличие по меньшей мере двух совместно работающих видов активности на одном участке субстрата. В растворимых системах это возможно только в случае высокой концентрации ферментов в смеси. Примерами ограничений, присущих целлюлазам грибов, являются относительно высокие концентрации, необходимые для ферментативного гидролиза, ограниченная термостабильность и высокий уровень неудачного связывания. Для получения более высокой производительности эти ограничения необходимо преодолеть.

Коммерчески доступные целлюлазы в основном относятся к ферментам грибов. Однако бактериальные ферментативные системы также интенсивно изучались. Растворимые ферменты Thermomonospora bispora или других термофильных аэробных бактерий обсуждались в качестве добавок к смесям целлюлаз грибов. Были описаны некоторые анаэробные бактерии, чьи внеклеточные ферментативные системы обладают более высокой удельной активностью и процессивностью по отношению к целлюлозе. Большинство из последних продуцируют большой внеклеточный ферментативный комплекс, в котором единичные ферменты связаны на основном каркасе, так называемом скаффолдине или Cip (интегрирующем целлюлосому белке). Эти комплексы удерживаются вместе благодаря сильным белок-белковым взаимодействиям, которые являются видоспецифичными. Эти комплексы называются целлюлосомами. Известно, что целлюлосомы продуцирует относительно небольшое количество бактерий. В настоящее время их список включает:

в типе Firmicutes:

Lachnospiraceae - Butyrivibrio fibrisolvens, Ruminococcus flavefaciens, R. albus;

Clostridiaceae - Clostridium cellulovorans, С cellobioparum, С papyrosolvens, С josui, C. cellulolyticum, С thermocellum, С sp. C7, Bacteroides sp. P-1, B. cellulosovens, Acetivibrio cellulolyticus;

в типе Actinobacteria:

Nocardiopsaceae - Thermobifida (Thermonospora) fusca;

в типе Fibrobacteres:

Fibrobacteriaceae - Fibrobacter succinogenes.

Некоторого улучшения в анализе эффективности целлюлосомы можно достичь, используя строго анаэробные, термофильные бактерии вида Clostridium thermocellum, которые являются микроорганизмами, обладающими самой высокой скоростью роста на трудно разлагаемом субстрате, кристаллической целлюлозе, поскольку они имеют ферментные системы³, которые являются одними из самых эффективных в отношении деградации целлюлозы. Не вдаваясь в теорию, следует отметить, что накапливаются некоторые доказательства того, что такая более высокая эффективность по сравнению с другими целлюлолитическими системами связана с формированием огромного ферментного комплекса, который, однако, нельзя получать в промышленных масштабах. Этот комплекс имеет диаметр, равный примерно 18 нм, а его масса превышает 2×10⁶ Да⁴. Для ферментативно активных клонов более или менее случайным образом путем скрининга геномных библиотек, полученных из С. Thermocellum, было клонировано около 30 генов, связанных с содержащими докерины целлюлосомами^5,6. Кроме того, был идентифицирован белок скаффолдин CipA, содержащий 9 модулей когезина типа I, с которыми особым образом стыкуются ферменты и другие белковые компоненты посредством своих 7 модулей докерина типа I⁷. Посредством взаимодействия когезин типа II-докерин белок CipA прикрепляется к соединенным с клеточной стенкой белкам OlpB или SdbA и возможно другим^8,9. Предполагается, что в формировании структуры этого огромного комплекса участвует неферментный компонент CspP. Тем не менее, не так много известно о структуре этого комплекса и о том, как он собран. Исследованные целлюлосомы, полученные из других бактерий, также содержат белок скаффолдин, которые чаще всего имеют другую архитектуру.

В геномной последовательности¹¹ бактерии Clostridium thermocellum с депозитным номером АТСС 27405¹² было идентифицировано 72 целлюлосомальных гена. Наиболее преобладающие целлюлосомальные компоненты были идентифицированы при помощи анализа протеом выделенных целлюлосом и при помощи мРНК анализа. Однако при этом не было ясно, какие компоненты являются необходимыми для расщепления целлюлозы, и какова их роль в формировании комплекса.

До сих пор была возможна только частичная реконструкция целлюлосомы путем создания небольших третичных комплексов мини-скаффолдина, объединенного с двумя ферментными компонентами, полученными рекомбинантным способом, и был продемонстрирован выраженный синергетический эффект¹⁴. Мутант, выделенный другой исследовательской группой, названный AD2, не абсорбировался целлюлозой, и не были охарактеризованы его молекулярный механизм действия, способность расщеплять целлюлозу и формировать целлюлосому^15,16. Из мутировавших культур С. thermocellum были выделены мутанты, не образующие целлюлосому, которые не адсорбируются на кристаллической целлюлозе¹⁷.

Другие группы сконструировали основной каркас, например, из трех модулей дивергентного когезина для направленного эквимолярного связывания такого же количества разных ферментных компонентов (например, в WO 2010057064). Структура комплекса целлюлосомы собирается на поверхности дрожжевых клеток при помощи сконструированного “консорциума дрожжей”. В отличие от комплекса по изобретению, задействовано только нестатистическое (упорядоченное) связывание, при этом нельзя подобрать соотношение компонентов, как это возможно по настоящему изобретению.

В WO 2010012805 углеводсвязывающий модуль (СВМ) и X-модуль из целлюлосомального скаффолдина используют для обеспечения более эффективного продуцирования и секреции белков в рекомбинантном хозяине. В этом случае ген целлюлазы является генетически слитым с полипептидной цепью, в которой модули СВМ и X используются в качестве модулей “хелперов” для экспрессии, а не с целью получения оптимизированного расщепления целлюлозы.

В US20090035811 содержащие когезин белки и обладающие ферментативной активностью целлюлазы продуцируются in vivo дрожжевыми клетками и остаются прикрепленными к клеточной поверхности. Это приводит к повышенной плотности ферментных комплексов на относительно большой клеточной поверхности. Не показано, как можно манипулировать составом ферментных компонентов и их соотношением. Продуцирующий целлюлосому организм (дрожжи) нельзя с легкостью адаптировать к композиции, подходящей для другого субстрата.

В отличие от несвязанной с клеткой системы по настоящему изобретению, недостаток связанных с дрожжевыми клетками целлюлосом, описанных в области техники, заключается в том, что они связываются с одним специфичным продуктом в зависимости от организма, для которого разработаны. Их эффективность не может быть оптимизирована путем изменения соотношения компонентов. Кроме того, нативные целлюлосомы, такие как целлюлосомы, связанные с дрожжевыми клетками, нельзя получать в промышленном масштабе.

Все три способа не обеспечивают активность целлюлазы, превышающую активность нативной целлюлосомы, вероятно в связи с тем, что состав комплекса является не совсем оптимальным, и не может быть адаптирован к особенностям субстрата.

Тем не менее, необходимо изучить in vitro сборку целлюлосомы и ее единичных компонентов в отношении роли отдельных генов в процессе гидролиза целлюлозы и расщеплении волокон. Однако такие попытки до сих пор не увенчались успехом в связи с непреодолимыми трудностями, связанными с получением компонентов, не находящихся в своем нативном состоянии - прочная связь в комплексе препятствует легкому отделению при помощи мягких, неденатурирующих методов.

Ферментативное расщепление нерастворимого и кристаллического материала, такого как кристаллическая целлюлоза и гетерогенная гемицеллюлоза, по-прежнему является неэффективным, медленным и требует высокой концентрации ферментов, что делает применение в промышленном масштабе дорогостоящим и малоэффективным при использовании ферментных препаратов, существующих на сегодняшний день.

Поэтому целью настоящего изобретения является предоставление новых ферментных составов, способных к ферментативному расщеплению эластичных субстратов, таких как кристаллическая целлюлоза и гетерогенная гемицеллюлоза с более высокой эффективностью.

Другой целью настоящего изобретения является предоставление новых ферментных составов, а также эффективных и экономичных in vitro способов и применений этих ферментных составов, которые преодолевают недостатки ферментных смесей предшествующего уровня техники, в частности, необходимости для ферментативного расщепления более низких концентраций ферментов, увеличенной термостабильности ферментных составов, и увеличенной скорости связывания фермента.

Краткое описание изобретения

Согласно настоящему изобретению, сильное увеличение активности может быть достигнуто благодаря комплексу по изобретению, как описано более подробно ниже. Продемонстрировано повышение активности такой ферментной системы, ответственной либо за непрерывную цепь каталитических событий, либо за синергическое воздействие на эластичные субстраты, в том числе, без ограничения, кристаллическую целлюлозу и гетерогенную гемицеллюлозу. Авторы изобретения смогли показать, что реконструированные in vitro комплексы по изобретению проявляют более высокую активность в отношении кристаллической целлюлозы, чем нативные целлюлосомы, выделенные из бактерий.

Авторы настоящего изобретения выделили мутантов С. thermocellum, которые не формируют комплексы, и вместо этого секретируют нативные целлюлосомальные компоненты, не находящиеся в комплексе. Эти белки изначально использовали для реконструкции искусственной целлюлосомы, обладающей повышенной активностью. Используя этот мутант, может быть впервые исследована роль синергизма при помощи in vitro реконструкции комплексов.

Таким образом, изобретение предоставляет связанный с частицами или не содержащий частиц комплекс, включающий: (а) основной каркас, содержащий по меньшей мере четыре участка связывания, причем по меньшей мере два участка связывания обладают по существу одинаковой специфичностью связывания; и (b) ферментный компонент, связанный in vitro с каждым из указанных четырех участков связывания, где по меньшей мере три из указанных ферментных компонента являются разными ферментными компонентами. Молярное соотношение в указанном комплексе модулей когезина в основном каркасе (а) к сумме содержащих докерин ферментных компонентов (b) составляет 1:1. По меньшей мере, три ферментных компонента (b) в основном каркасе предпочтительно присутствуют в комплексе в молярном отношении друг к другу от 1:1 до 1:50, 1:1,5 до 1:30, предпочтительно от 1:1,8 до 1:15.

В предпочтительном варианте комплекс представляет собой комплекс без частиц или изолированный комплекс, который не связан с живой клеткой, особенно предпочтительно не связан с дрожжевой клеткой.

Предпочтительно, указанные ферментные компоненты случайным образом связываются in vitro с по меньшей мере четырьмя участками связывания.

Используемый здесь термин “in vitro” означает отделенный от живой клетки или организма.

Термин “комплекс” или “ферментный комплекс”, используемый здесь, означает координирование и объединение компонентов, связанных химическим или биологическим взаимодействием. Указанные комплексы могут быть связаны вместе, формируя комплекс более высокого порядка (также синонимично используемый здесь как “искусственная целлюлосома” или “целлюлазный комплекс”), состоящий из одного или нескольких содержащих когезин основных каркасов, предпочтительно содержащих когезин каркасных белков (обозначенных также здесь “мини-скаффолдин”), и одного или более содержащих докерин ферментных или неферментных компонентов, о чем более подробно описано ниже. Кроме того, искусственная целлюлосома состоит из одного или нескольких содержащих докерин основных каркасов, предпочтительно содержащих докерин каркасных белков (также обозначенных здесь “мини-скаффолдин”), и одного или более содержащих когезин ферментных или неферментных компонентов. Используемый здесь термин “смесь ферментов”, напротив, относится к растворимым ферментам, производимым в промышленном масштабе.

Используемый здесь термин “связанный с частицами” комплекс означает, что комплекс по изобретению связан с частицами, которые служат в качестве материала-носителя. Подходящими частицами являются, например, наночастицы. Наночастицы, используемые в этом методе, не превышают 2000 нм, предпочтительно, их средний диаметр составляет менее 100 нм. Они могут состоять из органического или неорганического вещества, такого как кремний, оксид металла, золото, полистирол и другие органические полимеры, и других веществ неживой природы или гибридов из разных веществ (такие, как наночастицы ядро-оболочка). Предпочтительно используются ферромагнитные наночастицы, которые обладают суперпарамагнитным поведением. Более предпочтительно их ядро покрыто полимерной оболочкой, такой как оболочка из полистирола, а поверхность частиц химически модифицирована для обеспечения возможности образования химических связей с биомолекулами. Предпочтительно модификации содержат свободные карбоксильные группы (СООН) или свободные аминогруппы (NH₂) для реакций присоединения посредством сшивающих агентов для присоединения белков или химических молекул остова.

В качестве альтернативы, поверхности наночастиц, предпочтительно модифицированные аминными или карбоксильными функциональными группами, могут быть ковалентно сшиты предпочтительно с гетеробифункциональной молекулой, такой как полиэтиленгликолевый линкер, и, наконец, с нитрилотриуксусной кислотой (NTA) посредством глутаральдегида (аминная модификация) или EDC/сульфо-NHS (карбоксильная модификация), соответственно, согласно уровню техники. Молекулы мини-скаффолдина остова прикрепляются к остаткам NTA путем их слияния с полигистидином на концах белков (предпочтительно маркированных 6xHis) методом аффинного связывания с никелем, известным в уровне техники.

Наночастицы, покрытые основными каркасами, смешивают с ферментами, как описано при реконструкции комплексов.

Используемый здесь термин “без частиц” означает комплекс по изобретению, который не связан с клеткой или изолирован, соответственно.

Используемый здесь термин “основной каркас” относится к субстрату, используемому в качестве остова для комплекса, который предоставляет участки, подходящие для связывания ферментативных или неферментативных белковых компонентов. Остов (основание) может быть белковым остовом, каркасным остовом (скаффолдином) или полимерной органической молекулой с множеством участков связывания. Каркасный остов может состоять из одного или нескольких мини-скаффолдинов.

Термин “имеющий по существу такую же специфичность связывания”, используемый в отношении участков, связывающих ферментные компоненты, относится к специфичности связывания между модулями когезина и докерина такой, что друг с другом связываются только пары когезин-докерин, обладающие идентичной специфичностью связывания. Это можно проверить, например, путем смешивания пары белков и оценки показателя пробега в гель-электрофорезе в нативном состоянии.

В одном из вариантов изобретение относится к комплексу, согласно данному здесь определению, в котором основной каркас является линейным. Линейный основной каркас может быть синтетическим или биологическим. Синтетический основной каркас может быть, например, синтетическим полимерным носителем или линейным органическим полимером с функциональными группами, способными связывать белки. Белки могут быть ферментами, которые должны быть включены в комплекс, или белками, содержащими один или несколько модулей, участвующих во взаимодействии когезин-докерин (которые связывают ферментные компоненты). Биологический основной каркас может быть белком, содержащим встречающиеся в природе участки связывания (когезины) для докеринов, слитых с ферментными компонентами или связывающими модулями естественным образом или методами генной инженерии.

В другом варианте осуществления изобретения ферментные компоненты связаны с линейным основным каркасом посредством взаимодействия когезин-докерин. В предпочтительном варианте осуществления изобретения основной каркас комплекса по изобретению имеет по меньшей мере четыре участка связывания когезина для докеринов.

Предпочтительно остов комплекса по изобретению состоит из одного или нескольких белков, где один или несколько белков представляют собой белки остова, которые связаны между собой посредством химического взаимодействия или взаимодействия когезин-докерин, специфичность связывания которого отличается от таковой для взаимодействия ферментов с остовом, причем специфичность связывания для взаимодействия с образованием перекрестных связей отличается от специфичности связывания ферментов. Более предпочтительно, один или несколько белков сшиты посредством взаимодействия когезин-докерин, специфичность связывания которого отличается от специфичности связывания взаимодействия когезин-докерин, связывающего ферментные компоненты.

Используемый здесь термин “взаимодействие когезин-докерин” относится к взаимодействию между когезином и докерином. Докерин представляет собой белковый модуль, обнаруженный в компонентах целлюлосомы, предпочтительно, один модуль в каждом ферментном компоненте целлюлосомы. Партнером по связыванию докерина является модуль когезина, который, как правило, представляет собой повторяющуюся модульную часть белка основного каркаса в целлюлосоме. Это взаимодействие имеет важное значение для конструирования комплекса целлюлосомы. Такая же система когезин-докерин в комплексе по изобретению используется для связывания различных ферментных компонентов в комплекс. Один или несколько белков основного каркаса по изобретению могут быть сшиты посредством взаимодействия когезин-докерин, при котором пара когезин-докерин имеет специфичность связывания, отличающуюся от таковой для пары когезин-докерин, используемой для связывания ферментных компонентов. Связывание компонентов в полисахарид, наряду с другими методами, может быть определено по замедлению миграции полос белка в гель-электрофорезе в нативном состоянии или путем измерения количества белков после разделения жидкой фракции и фракции твердых частиц, содержащей частицы целлюлозы, стандартным методом для определения концентрации белка, известным специалисту в данной области.

В другом варианте основной каркас комплекса по изобретению получают, используя некаталитический каркасный белок, выделенный из разлагающих клетчатку микроорганизмов, формирующих целлюлосому, или их генетически модифицированных производных.

Используемый здесь “целлюлолитический микроорганизм, формирующий целлюлосому” относится к таким бактериям и грибам, которые формируют внеклеточные комплексы (называемые целлюлосомами), в которых ферменты связаны с основным каркасом посредством взаимодействия когезин-докерин. Далее, целлюлолитические микроорганизмы, формирующие целлюлосому, которые могут быть использованы в настоящем изобретении, представляют собой: бактерии, такие как Acetivibrio cellulolyticus, Bacterioides cellulosolvens, Butyrivibrio fibrisolvens, Clostridium acetobutylicum, С. cellulolyticum, С. cellulovorans, С. cellobioparum, С. josui, С. papyrosolvens, С. thermocellum, С. sp. C7, С. sp. P-1, Fibrobacter succinogenes, Ruminococcus albus, Р. flavefaciens, и грибковых микроорганизмов, таких как Piromyces sp. E2.

В другом варианте осуществления основной каркас получают из некаталитического каркасного белка CipA из Clostridium thermocellum или его генетически модифицированных производных.

Используемый здесь термин “генетически модифицированные производные” означает, что белок основного каркаса комплекса по изобретению является генетически модифицированным, например, основной каркас является генетически модифицированным производным, полученным из CipA-белка С. thermocellum или основной каркас является генетически слитым с модулем докерина или His-маркированной последовательностью, или изменено количество или порядок встречающихся в природе модулей (в CipA), или изменена нуклеотидная последовательность путем введения или удаления сайтов рестрикции, адаптации использования кодонов или изменения аминокислотных остатков в определенных позициях.

В предпочтительном варианте основной каркас комплекса по изобретению содержит УСМ-c1-c1-d3, представленный в SEQ ID NO:24, c3-с1-c1-d2, представленный в SEQ ID NO:22, c2-c1-с1, представленный в SEQ ID NO:26, или их производные, содержащие в своих модулях когезина аминокислотную последовательность с более 60% идентичностью.

Термин “идентичность последовательности”, известный специалистам в данной области определяет степень родства между двумя или более нуклеотидными или полипептидными молекулами, для которых определяют сходство их последовательностей. Процент “идентичности” определяется процентом идентичных областей двух или более последовательностей с учетом зазоров или других особенностей этих последовательностей.

Идентичность между родственными полипептидами может быть определена известными методами. Как правило, используются специальные компьютерные программы с алгоритмами, в которых учитываются специальные требования. Согласно предпочтительным процедурам определения идентичности сначала генерируют наибольшее согласие между изучаемыми последовательностями. Компьютерные программы для определения гомологии между двумя последовательностями, включают, без ограничений, программный пакет GCG, в том числе GAP (Devereux J et al., (1984); Genetics Computer Group University of Wisconsin, Madison (WI); BLASTP, BLASTN и FASTA (Altschul S et al., (1990)). Программу BLAST X можно приобрести в Национальном центре биотехнологической информации (NCBI) и через другие источники (BLAST Handbook, Altschul S et al., NCB NLM NIH Bethesda MD 20894; Altschul S et al.,1990). Для определения идентичности последовательностей также может быть использован хорошо известный алгоритм Смита Ватермана (Smith Waterman).

Предпочтительные параметры для сравнения последовательностей включают следующие:

Алгоритм: Needleman S.B. and Wunsch, C.D. (1970)

Матрица сравнения: BLOSUM62 от Henikoff S. и Henikoff J.G. (1992).

Штраф за пропуск в последовательностях: штраф при длине пропуска 12: 2

Программа GAP также подходит для использования с указанными выше параметрами. Приведенные выше параметры являются стандартными параметрами (параметрами по умолчанию) для сравнения аминокислотных последовательностей, в которых пропуски на концах не уменьшают значение идентичности. При сравнении очень коротких последовательностей с эталонной последовательностью, может возникнуть необходимость увеличить ожидаемое значение до 100000, а в некоторых случаях уменьшить длину слова (размера слова) до 2.

Также можно использовать модельные алгоритмы, штрафы за открытие пропусков, штрафы за удлинение пропусков и сравнение матриц, в том числе указанных в Program Handbook, Wisconsin Package, версия 9, сентябрь 1997. Выбор будет зависеть от проводимого сравнения, а также от того, будет ли это сравнение проводиться между парами последовательностей, для которого предпочтительными являются программы GAP или Best Fit, или между одной последовательностью и большой базой данных последовательностей, для которого предпочтительными являются программы FASTA или BLAST. Согласие 60%, определенное при помощи указанных алгоритмов, описывается как 60% идентичность. То же относится к более высокой степени идентичности.

В предпочтительных вариантах осуществления изобретения производные имеют более 60% идентичность аминокислотной последовательности, предпочтительно более 70%, более предпочтительно более 80% или 90% идентичность аминокислотной последовательности в их модулях когезина.

В другом варианте осуществления изобретения основной каркас комплекса по изобретению содержит углеводсвязывающий модуль (CBM). Предпочтительно, углеводсвязывающий модуль представляет собой углеводсвязывающий модуль семейства CBM3 согласно классификации, приведенной в базе данных CAZy (http://www.cazv.orq/Carbohvdrate-Bindinq-Modules.html) для гена CipA Clostridium thermocellum, который интегрирован или прикреплен к линейному основному каркасу.

Используемый здесь термин “углеводсвязывающий модуль (СВМ)” относится к непрерывной аминокислотной последовательности, обладающей углеводсвязывающей активностью. CBM могут либо вводиться в комплекс (“мини-скаффолдины”) по изобретению, либо CBM присутствует в ферментном компоненте, либо, в качестве альтернативы, он может быть генетически связан с мини-скаффолдинами посредством слияния с белковым компонентом. Разные CBM могут распознавать разные полисахариды или полисахаридные структуры. CBM также может быть связан с мини-скаффолдинами в результате генетической модификации или химической реакции с функциональной группой основного каркаса. CBM вызывает “эффект ориентации”, т.е. усиливает связывание между комплексом и субстратом, что является особенно выгодным для нерастворимых субстратов. CBM определены как дискретно сложенный некаталитический полипептидный модуль, связывающийся с полисахаридом или комплексным углеводом. Они могут быть обнаружены или созданы методами генной инженерии с целью слияния по модульному принципу с ферментами или каркасными белками, или в виде генетического слияния, связанного с основным каркасом посредством взаимодействия когезин-докерин или другими средствами. В предпочтительном варианте они связаны с кристаллической целлюлозой и принадлежат к семейству 3 СВМ (CBM3). (См.: http://www.cazv.org/Carbohvdrate-Bindinq-Modules.html). Связывание с полисахаридом может быть определено, наряду с другими методами, по замедлению миграции белка в гель-электрофорезе в нативном состоянии, в котором полисахарид равномерно распределен в геле.

В другом варианте осуществления изобретение относится к комплексу, согласно данному здесь определению, в котором ферментный компонент содержит по меньшей мере модуль докерина и каталитический модуль фермента.

Термин “модуль” описывает отдельно складывающийся фрагмент в полипептиде, который, как в “Лего”, может быть использован для сборки белков с новыми характеристиками методами генной инженерии или в ходе естественной рекомбинации. Используемый здесь “каталитический модуль фермента” относится к белковому модулю, который обеспечивает каталитическую активность полипептида. Все ферменты целлюлосомы являются мультимодульными ферментами и состоят из каталитических и некаталитических модулей, по меньшей мере каталитического модуля и модуля докерина. Некаталитический модуль может быть докерином, когезином, CBM, гомологичным S-слою модулем или модулем с еще неизвестной функцией (часто называемым X-модулем).

В еще одном варианте осуществления изобретение относится к комплексу, согласно данному здесь определению, в котором ферментные компоненты выбирают из группы, состоящей из процессивных или непроцессивных эндо-β-1,4-глюканаз, процессивных экзо-β-1,4-глюканаз и гликозидаз из полисахаролитических или сахаролитических микроорганизмов или их генетически модифицированных производных.

Ферментные компоненты, объединенные в комплекс по изобретению, включают помимо прочего целлюлазы из целлюлосомы Clostridium thermocellum, например, компоненты CbhA, CelA, CelE, CelJ, CelK, CeIR, CelS или CelT термофильных бактерий Clostridium thermocellum, или термостабильных β-гликозидаз, например, β-глюкозидазы BgIB из термофильных бактерий Thermotoga neapolitana.

Заменяя на другие виды активности, удаляя или добавляя ферментные компоненты или изменяя их молярное соотношение можно расширять спектр и усиливать активность комплексов по отношению к другим субстратам. Новые компоненты могут включать β-глюкозидазы, гемицеллюлазы (ксиланазы, маннаназы, арабинофуранозидазы, глюкуронидазы, ксилан-эстеразы и др.), пектиназы, пектин-лиазы, амилазы и другие ферменты для гидролиза лигноцеллюлозной биомассы, другие полисахариды или комбинацию ферментов для биохимического пути синтеза.

Используемые здесь “полисахаролитические микроорганизмы” относятся к гидролитическим микроорганизмам, способным разлагать полисахариды, такие как амилолитические, пектинолитические, целлюлолитические или гемицеллюлолитические микроорганизмы. Используемые здесь “сахаролитические микроорганизмы” относятся к микроорганизмам, использующим углеводы в качестве основного источника углерода и энергии.

В еще одном варианте осуществления изобретение относится к комплексу, согласно данному здесь определению, в котором по меньшей мере три ферментных компонента выбирают из группы, состоящей из целлюлолитических и гемицеллюлолитических ферментов, полученных из других микроорганизмов.

Примерами полисахаридов являются ацетан, агар-агар, альгинат, амилопектин, арабинан, арабиногалактан, арабиноксилан, карбоксиметилцеллюлоза, целлюлоза, хитин, хитозан, хризоламинарин, курдлан, циклозофоран, декстран, декстрин, эмульсан, фруктан, галактан, галактоманнан, геллан, α-глюкан, β-глюкан, глюкуронан, глюкуроноксилан, гликоген, N-ацетил-гепарозан, гидроксиэтилцеллюлоза, индикан, инулин, кефиран, ламинарин, лентинан, леван, лихенин, лихенан, люпин, маннан, пахиман, пектиновый галактан, пектин, пентозан, плеуран, полигалактуроновая кислота, пуллулан, рамногалактуронан, шизофиллан, склероглюкан, крахмал, сукциногликан, велан, ксантан, ксилоглюкан, зимозан.

Примерами целлюлолитических микроорганизмов являются бактерии, такие как Acetivibrio cellulolyticus, A. cellulosolvens, Anaerocellum thermophilum, Bacteroides cellulosolvens, Butyrivibrio fibrisolvens, Caldicellulosiruptor saccharolyticus, Cs. lactoaceticus, Cs. kristjansonii, Clostridium acetobutylicum, С. aldrichii, С. celerescens, С. cellobioparum, С. cellulofermentas, С. cellulolyticum, С. cellulosi, С. cellulovorans, С. chartatabidum, С. herbivorans, С. hungatei, С. josui, С. papyrosolvens, С. sp. C7, С. sp. P-1, С. stercorarium, С. thermocellum, С. thermocopriae, С. thermopapyrolyticum, Fibrobacter succinogenes, Eubacterium cellulolyticum, Ruminococcus albus, R. flavefaciens, R. succinogenes, Achromobacter piechaudii, Actinoplan