Способ определения зиготности гена fad3 в каноле

Способ определения зиготности гена fad3 в каноле

Иллюстрации

Показать все

Реферат

Перекрестная ссылка на родственную заявку

[0001] По настоящей заявке испрашивается приоритет предварительной заявки США № 61/550170, поданной 21 октября 2011 г., которая включена в настоящее описание посредством ссылки во всей полноте.

Уровень техники раскрытия

[0002] Род Brassica включает канолу, одну из наиболее важных мировых масличный культур и важную масличную культуру, выращиваемую в умеренных широтах. Канолу традиционно характеризуют как Brassica napus L. (вид, выведенный в результате межвидового скрещивания Brassica rapa и Brassica oleracea), в который эруковая кислота и глюкозинолаты были устранены или значительно уменьшены посредством обычной селекции. Большая часть масла канолы имеет форму растительных масел, производимых для потребления человеком. Существует также растущий рынок использования масла канолы в промышленных применениях.

[0003] Род Brassica состоит из трех диплоидных видов, каждый из которых обладает уникальным геномом, которые обозначают как геном A, геном B или геном C. Растения Brassica rapa обладают диплоидным геномом A. Растения Brassica nigra обладают диплоидным геномом B. Растения Brassica oleracea обладают диплоидным геномом C. Гибриды данных видов могут быть получены посредством скрещивания между двумя диплоидными видами. Канола является амфидиплоидным видом, который, как полагают, произошел от гибридизации Brassica oleracea, имеющей диплоидный геном C, и Brassica rapa, имеющей диплоидный геном A. Цитогенетические исследования показали, что геномы AA и CC демонстрируют такую степень родства, что являются частично гомологичными друг другу, и полагают, что они произошли от генома общего предка (Prakash and Hinata, 1980). Хотя технически их классифицируют как диплоиды, геномы обоих видов-предшественников содержат большое количество участков, дублирующих друг друга (Song et al., 1991). Генетический анализ показал, что геном AA Brassica rapa внес десять хромосом в Brassica napus, тогда как Brassica oleracea внесла девять хромосом из своего генома CC в качестве материнского донора (Song et al., 1992).

[0004] Качество пищевого и технического масла, получаемого из конкретного сорта семян канолы, определяют по составляющим его жирным кислотам, поскольку тип и уровень ненасыщенности жирных кислот имеет последствия как для пищевых, так и для технических применений. Обычное масло канолы содержит приблизительно 60% олеиновой кислоты (C18:1), 20% линолевой кислоты (C18:2) и 10% линоленовой кислоты (18:3). Количество полиненасыщенной линоленовой кислоты, типичное для обычной канолы, нежелательно, поскольку масло легко подвергается окислению, причем на скорость окисления воздействуют несколько факторов, включая присутствие кислорода, воздействие света и тепла, и присутствие собственных или добавленных антиоксидантов и прооксидантов в масле. Окисление приводит к неприятным привкусам и прогорклому вкусу в результате повторной жарки (индуцированное окисление) или хранения в течение продолжительного периода (автоокисление). Окисление также может изменять смазочные и вязкие свойства масла канолы.

[0005] Профили масла канолы, которые демонстрируют пониженный уровень полиненасыщенных жирных кислот и повышенный уровень мононенасыщенной олеиновой кислоты по сравнению с обычным маслом канолы, связаны с более высокой устойчивостью к окислению. Подверженность отдельных жирных кислот окислению зависит от степени их ненасыщенности. Таким образом, скорость окисления линоленовой кислоты, которая имеет три двойные связи углерод-углерод, в 25 раз выше, чем олеиновой кислоты, которая имеет только одну двойную связь углерод-углерод, и в 2 раза выше, чем линолевой кислоты, которая имеет две двойные связи углерод-углерод. Линолевая и линоленовая кислоты также обладают наибольшим воздействием на запах и аромат, поскольку они легко образуют гидропероксиды. Масло с высоким содержанием олеиновой кислоты (содержание олеиновой кислоты >=70%) менее подвержено окислению во время хранения, жарки и рафинирования, и может нагреваться до более высокой температуры без дымления, что делает его более подходящим в качестве масла для приготовления пищи.

[0006] Качество масла канолы определяют по составляющим его жирным кислотам, таким как олеиновая кислота (C18:1), линолевая кислота (C18:2) и линоленовая кислота (C18:3). Большинство культиваров канолы обычно дают масло с приблизительно 55-65% олеиновой кислоты и 8-12% линоленовой кислоты. Высокие концентрации линоленовой кислоты приводят к нестабильности масла и нетипичному запаху, тогда высокий уровень олеиновой кислоты повышает устойчивость к окислению и пищевую ценность масла. Следовательно, разработка культиваров канолы с повышенным содержанием олеиновой кислоты и пониженным содержанием линоленовой кислоты очень желательна для качества масла канолы.

[0007] Было идентифицировано два локуса, и определена их геномная локализация, из культивара канолы, который обладает повышенным содержанием олеиновой кислоты и пониженным содержанием линоленовой кислоты. Один локус обладает значительным воздействием, и второй локус обладает незначительным воздействием на производство повышенного содержания олеиновой кислоты и пониженного содержания линолевой кислоты. Определено, что основным локусом для высокого содержания олеиновой кислоты (C18:1) является ген десатуразы-2 жирных кислот (fad-2), и он расположен на группе сцепления N5. Второй локус расположен на группе сцепления N1. Одним из основных локусов количественных признаков (QTL) для линоленовой кислоты (C18:3) является ген десатуразы-3 жирных кислот генома C (fad-3c), и он расположен на группе сцепления N14. Второй основной QTL располагается на группе сцепления N4 и представляет собой ген десатуразы-3 жирных кислот генома A (fad-3a). Геномные последовательности генов fad-2 и fad-3c амплифицировали и секвенировали как из индуцированного этилметансульфонатом (ЭМС) мутанта, так и из культивара канолы дикого типа. Сравнение последовательностей аллелей мутанта и дикого типа генов fad-2 и fad-3c показало наличие однонуклеотидных полиморфизмов (SNP) в генах растений, мутировавших под действием ЭМС. На основании различий последовательностей между аллелями мутанта и дикого типа было разработано два SNP-маркера, соответствующих мутациям генов fad-2 и fad-3c (Hu et al., 2006).

[0008] Современные способы производства семян гибрида F₁ Brassica имеют ограничения в отношении стоимости и чистоты семян. Обычно для данных способов требуются стабильные, сибс-несовместимые и самонесовместимые, близкие к гомозиготным родительские линии разведения, каковые родительские линии разведения доступны только после повторного самоопыления для создания инбредных линий. Кроме того, инбридинг для развития и сохранения родительских линий осуществляется посредством трудоемких методов, таких как опыление бутонов, поскольку системы производства гибридных семян Brassica, основанные на самонесовместимых признаках, должны использовать строго самонесовместимые растения. Условия окружающей среды во время процесса разведения, такие как температура и влажность, обычно влияют на липидный метаболизм растений, таким образом также влияя на содержание жирных кислот (Harwood, 1999). Изменчивость окружающей среды, следовательно, делает фенотипическую селекцию растений менее надежной. Deng и Scarth (1998) обнаружили, что повышение температуры после цветения значительно снижает уровень C18:3 и повышает C18:1. Аналогичные результаты приводились в других исследованиях (Yermanos and Goodin, 1965; Canvin, 1965).

[0009] Селекция сортов с низким содержанием линоленовой кислоты является особенно сложной, поскольку содержание C18:3 является мультигенным признаком и наследуется рецессивным образом с относительно низкой наследуемостью. Генетический анализ популяции, получаемой от скрещивания между "Stellar" (имеющим низкое содержание C18:3 (3%)) и "Drakkar" (имеющим "обычный" уровень C18:3 (9-10%)), показало, что признак низкого содержания C18:3 управляется двумя основными локусами с аддитивным действием, обозначаемыми L1 и L2 (Jourdren et al., 1996b). Было обнаружено, что эти два основных локуса, управляющих содержанием C18:3, соответствуют двум генам fad-3 (десатуразы-3 жирных кислот); один расположен в геноме A (происходящем от Brassica rapa), а другой в геноме C (происходящем от Brassica olecera) (Jourdren et al., 1996; Barret et al., 1999).

[0010] Признаки, которые непрерывно изменяются из-за генетических (аддитивных, доминантных и эпистатических) и относящихся к окружающей среде факторов, обычно называют "количественными признаками". Количественные признаки можно отличать от "качественных" или "дискретных" признаков на основании двух факторов: воздействия окружающей среды на экспрессию генов, которое производит непрерывное распределение фенотипов; и сложной схемы расщепления, производимой мультигенным наследованием. Идентификация одного или нескольких участков генома, связанных с экспрессией количественного признака, привело к открытию локусов количественных признаков ("QTL"). Thormann et al., (1996) локализовали два QTL, которые объясняли 60% изменчивости содержания линоленовой кислоты, тогда как Somers et al., (1998) идентифицировали три QTL, которые вместе объясняли 51% фенотипической изменчивости содержания C18:3. Chen и Beversdorf (1990) также описали аддитивную модель трех локусов. Rucker и Robbelen (1996) указали, что в стадии десатурации с наибольшей вероятностью принимают участие несколько минорных генов.

[0011] Наследуемость содержания C18:3 была определена равной 26-59% (Kondra and Thomas, 1975) (где изменчивость наследуемости является функцией генетики, а не факторов окружающей среды). Сложность наследования линоленовой кислоты может объясняться тем фактом, что линоленовая кислота может синтезироваться как десатурацией C18:2, так и удлинением C16:3 (Thompson, 1983).

[0012] В отличие от линоленовой кислоты наследование олеиновой кислоты является менее сложным, и наследуемость олеиновой кислоты относительно высока. Сообщалось, что высокое содержание олеиновой кислоты контролируется основным локусом, называемым ген fad-2 (десатуразы жирных кислот 2), который кодирует фермент, отвечающий за десатурацию олеиновой кислоты до линолевой кислоты (C18:2) (Tanhuanpaa et al., 1998; Schierholt et al., 2001). Все копии функционального гена fad-2, о которых было сообщено, и которые были локализованы к настоящему времени, расположены на происходящей из генома A группы сцепления N5 (Scheffler et al., 1997; Schierholt et al., 2000). Chen и Beversdorf (1990) сообщали, что накопление олеиновой кислоты контролируется двумя генетическими системами расщепления, причем одна действует на удлинение цепи, а другая использует десатурацию. Наследуемость содержания C18:1 определяли равной от 53% до 78% (Kondra and Thomas 1975) и 94% (Schierholt and Becker, 1999) соответственно. Благодаря более высокой наследуемости экспрессия содержания C18:1 менее подвержена воздействию окружающей среды и относительно стабильна (Schierholt and Becker, 1999).

[0013] В зародышевой плазме канолы Nexera™ от 1 до 2 генов, как обнаружено, контролируют содержание C18:1, и по меньшей мере 3 гена участвуют в экспрессии C18:3 (Nexera™ является товарным знаком Dow AgroSciences, LLC). В потомстве после расщепления распределение содержания C18:3 в семенах является непрерывным, что делает сложной идентификацию генотипических классов с желаемым уровнем C18:3. Кроме того, низка корреляция содержания жирных кислот между растениями, выращиваемыми в оранжерее (GH) и в поле, что делает еще более сложным надежную селекцию растений с желаемым уровнем C18:3 в GH.

[0014] Для детектирования наличия определенного гена в образце ткани растения можно использовать различные способы. Одним примером является метод пиросеквенирования, описанный Winge (Innov. Pharma. Tech. 00:18-24, 2000). В данном способе конструируют олигонуклеотид, который перекрывает вставленную последовательность ДНК и геномную ДНК, примыкающую к ней. Олигонуклеотид подвергают гибридизации с одноцепочечным продуктом ПЦР ("ампликоном") от представляющего интерес участка (т.е. один праймер во вставленной последовательности и один во фланкирующей геномной последовательности) и инкубируют в присутствии ДНК-полимеразы, АТФ-сульфурилазы, люциферазы, апиразы, аденозин-5'-фосфосульфата и люцеферина. dNTP добавляют по отдельности, и их включение приводит к световому сигналу, который измеряют. Световой сигнал указывает на наличие трансгенной вставки/фланкирующей последовательности за счет успешной амплификации, гибридизации и удлинения на одно или несколько оснований. (Данный метод обычно применяют для начального секвенирования, не для детектирования конкретного гена, когда он известен).

[0015] Флуоресцентная поляризация является другим способом, который можно использовать для детектирования ампликона. При следовании данному способу, олигонуклеотид конструируют так, чтобы перекрывать соединение геномной фланкирующей и вставленной ДНК. Олигонуклеотид подвергают гибридизации с одноцепочечным продуктом ПЦР от представляющего интерес участка (один праймер во вставленной ДНК и один во фланкирующей геномной последовательности ДНК) и инкубируют в присутствии ДНК-полимеразы и флуоресцентно-меченного ddNTP. Удлинение на одно основание приводит к включению ddNTP. Включение можно измерять как изменение поляризации с применением флуориметра. Изменение поляризации указывает на наличие трансгенной вставки/фланкирующей последовательности за счет успешной амплификации, гибридизации и удлинения на одно основание.

[0016] Описано применение молекулярных маяков при определении последовательности. Кратко говоря, молекулярные маяки содержат олигонуклеотидный зонд FRET (резонансный перенос энергии флуоресценции), который можно конструировать так, чтобы FRET-зонд перекрывал соединение фланкирующей геномной ДНК и ДНК вставки. Уникальная структура FRET-зонда приводит к тому, что он имеет вторичную структуру, которая удерживает флуоресцентный и гасящий фрагменты в непосредственной близости. FRET-зонд и праймеры ПЦР (один праймер в последовательности ДНК вставки и один во фланкирующей геномной последовательности) проходят цикл в присутствии термостабильной полимеразы и dNTP. После успешной ПЦР-амплификации гибридизация FRET-зонда с мишеневой последовательностью приводит к исчезновению вторичной структуры зонда и пространственного разделения флуоресцентного и гасящего фрагментов. Флуоресцентный сигнал указывает на наличие фланкирующей геномной последовательности/последовательности трансгенной вставки за счет успешной амплификации и гибридизации.

[0017] Анализ гидролиза зондов, также известный как TaqMan® ПЦР (TaqMan® является зарегистрированным торговым знаком Roche Molecular Systems, Inc.), предлагает способ детектирования и количественного определения наличия последовательности ДНК. Кратко говоря, TaqMan® ПЦР использует олигонуклеотидный FRET-зонд, который сконструирован так, чтобы часть олигомера была расположена в трансгене, а другая часть олигомера во фланкирующей геномной последовательности для детектирования по событию. FRET-зонд и праймеры ПЦР (один праймер в последовательности ДНК вставки и один во фланкирующей геномной последовательности) проходят цикл в присутствии термостабильной полимеразы и dNTP. Гибридизация FRET-зонда и последующее расщепление во время стадии ПЦР-амплификации вследствие 5'-экзонуклеазной активности Taq-полимеразы приводит к отщеплению и освобождению флуоресцентного фрагмента от гасящего фрагмента на FRET-зонде. Флуоресцентный сигнал указывает на наличие фланкирующей последовательности/последовательности трансгенной вставки за счет успешной гибридизации и амплификации.

[0018] Для специфической к последовательности идентификации ДНК также используют молекулярные маркеры. Селекция по молекулярным маркерам основана на генотипах и, следовательно, не зависит от воздействия окружающей среды. Молекулярные маркеры помогают уменьшить проблему ненадежности селекции растения в оранжерее, возникающую из-за низкой корреляции содержания жирных кислот между выращиваемыми в оранжерее растениями и выращиваемыми в поле растениями. Важно отметить, что молекулярные маркеры, тесно связанные с генами, контролирующими содержание C18:1 и C18:3, могут облегчать раннюю селекцию растений, несущих гены для высокого содержания C18:1 и низкого содержания C18:3. Маркерзависимая селекция на ранней стадии может способствовать сохранению пространства в оранжерее, повышает эффективность использования оранжереи и уменьшает трудоемкость разведения в поле.

[0019] В более общем смысле, преимущества молекулярных маркеров над морфологическими маркерами заключаются в том, что: молекулярные маркеры могут быть высоко полиморфными, тогда как морфологические маркеры строго зависят от фенотипа; морфологические маркеры могут вмешиваться в подсчет некоторых количественных фенотипов, тогда как молекулярные маркеры демонстрируют взаимосвязь между генотипом и фенотипом 1:1 (тем самым делая возможным однозначный подсчет всех возможных генотипов для заданного локуса); и эпистатические взаимодействия способствуют ограничению количества морфологических маркеров, подходящих для популяции, тогда как молекулярные маркеры не взаимодействуют эпистатически.

[0020] Было определено, что различные типы молекулярных маркеров, такие как маркеры RAPD (случайно амплифицируемая полиморфная ДНК) (Tanhuanpaa et al., 1995; Hu et al., 1995; Rajcan et al., 1999; Jourdren et al., 1996), маркеры RFLP (полиморфизм длины рестрикционых фрагментов) (Thormann et al., 1996) и маркеры SCAR (амплифицированный участок с известной последовательностью) (Hu et al., 1999), связаны с низким уровнем C18:3 в Brassica napus. Также были определены молекулярные маркеры для высокого содержания C18:1. Было определено, что маркер RAPD связан с QTL, воздействующим на концентрацию олеиновой кислоты в весенней репе масличной (B. rapa ssp. Oleifera), и позже он был превращен в маркер SCAR (Tanhuanpaa et al., 1996). Schierholt et al., (2000) идентифицировали три маркера AFLP (полиморфизм длины амплифицированных фрагментов), связанных с мутацией высокого содержания олеиновой кислоты в озимом масличном рапсе (B. napus L). Tanhuanpaa et al., (1998) разработали аллель-специфический маркер ПЦР для олеиновой кислоты посредством сравнения дикого типа и аллеля высокого содержания олеиновой кислоты локуса гена fad-2 в весенней репе масличной (B. rapa ssp. oleifera). Однако, большинство этих маркеров являются низкопроизводительными маркерами, такими как RAPD, AFLP и RFLP, и не подходят для масштабного скрининга с помощью автоматики.

Краткая сущность изобретения

[0021] Рассматриваемое раскрытие частично относится к TaqMan® ПЦР-анализам по конечной точке для детектирования гена fad-3c в каноле и высокопроизводительного анализа его зиготности. Рассматриваемое раскрытие, кроме того, относится, частично, к применению гена fad-3c дикого типа в каноле в качестве эталона для применения в определении зиготности. Можно использовать те или иные соответствующие процедуры, для того чтобы однозначно устанавливать зиготность и сорт линий канолы, содержащих рассматриваемый ген.

[0022] Рассматриваемое раскрытие также предлагает соответствующие наборы для определения зиготности и сорта по образцу (канолы, например).

[0023] Таким образом, вариант осуществления рассматриваемого раскрытия относится к TaqMan® ПЦР, гибкой платформе для высокопроизводительного анализа зиготности и скрещивания. Использование способа применения TaqMan® ПЦР по конечной точке, представляемого данным раскрытием, предлагает надежный, точный и высокопроизводительный способ применения для анализа зиготности fad-3c и скрещивания у канолы.

Краткое описание фигур

[0024] Фигура 1. представляет собой участок последовательности гена fad-3c (SEQ ID NO:1), иллюстрирующий положение мутации fad-3c, идентифицированной Hu et al., (2006) (стрелка). Интрон 6 напечатан более светлым текстом, а второй полиморфизм отмечен с помощью звездочки.

[0025] Фигура 2. представляет собой пример результатов анализа зиготности (канолы), демонстрирующий три генотипа fad-3c после TaqMan®-анализа по конечной точке (результаты получали с применением программного обеспечения SDS 2.4, доступного от Applied Biosystems, Foster City, CA, США).

Краткое описание последовательностей

[0026] SEQ ID NO:1 предлагает участок последовательности гена fad-3c, иллюстрирующий положение мутации fad-3c.

[0027] SEQ ID NO:2 предлагает прямой праймер D-CL-FAD3C-F (который связывается с фланкирующей геномной последовательностью).

[0028] SEQ ID NO:3 предлагает обратный праймер D-CL-FAD3C-R2 (который связывается с последовательностью вставки).

[0029] SEQ ID NO:4 предлагает зонд D-CL-FAD3C-FAM для преимущественного связывания мутировавшего гена fad-3c с однонуклеотидным полиморфизмом G->A.

[0030] SEQ ID NO:5 предлагает зонд D-CL-FAD3C-VIC для детектирования гена fad-3c дикого типа.

Подробное описание раскрытия

[0031] Рассматриваемое раскрытие частично относится к TaqMan® ПЦР-анализам по конечной точке для детектирования гена fad-3c в каноле и высокопроизводительного анализа его зиготности. Рассматриваемое раскрытие, кроме того, относится, частично, к применению гена fad-3c дикого типа в каноле в качестве эталона для применения в определении зиготности. Можно использовать те или иные соответствующие процедуры, для того чтобы однозначно устанавливать зиготность и сорт линий канолы, содержащих рассматриваемый ген. Рассматриваемое раскрытие также предлагает соответствующие наборы для определения зиготности и сорта по образцу (канолы, например). Таким образом, вариант осуществления рассматриваемого раскрытия относится к TaqMan® ПЦР, гибкой платформе для высокопроизводительного анализа зиготности и скрещивания. Использование способа применения TaqMan® ПЦР по конечной точке, представляемого данным раскрытием, предлагает надежный, точный и высокопроизводительный способ применения для анализа зиготности fad-3c и скрещивания у канолы.

[0032] Были разработаны новые анализы рассматриваемого изобретения, частично основанные на мутации однонуклеотидного полиморфизма (SNP) аллеля fad-3c в соответствии с данными Hu et al., (2006). Анализ использует два участка праймеров и два MGB-зонда для детектирования мутантных и дикого типа аллелей fad-3c (см. таблица 1). Праймеры и зонды TaqMan® для детектирования данной SNP-мутации конструировали частично посредством программного обеспечения Primer express (Applied Biosystems, Austin, Tx) с применением последовательностей гена fad-3c. Данный новый fad-3c TaqMan®-анализ проверяли с применением ДНК, экстрагированной из гомозиготных, гемизиготных и дикого типа (без мутации) по гену fad-3c растений канолы. Также частично оптимизировали fad-3c TaqMan®-анализ по эффективности с помощью системы ПЦР в реальном времени Applied Biosystems 7900HT как в 96, так и в 384-луночном формате с применением условий быстрого теплового цикла ПЦР.

[0033]	Таблица 1Последовательности праймеров и зондов, применяемых в fad-3c TaqMan®-анализе
SEQ ID NO:	Название	Описание	Последовательность (5'-3')
SEQ ID NO:2	D-CL-FAD3c-F	Прямой праймер	ACGATGATAAGCTGCCTTGGT
SEQ ID NO:3	D-CL-FAD3c-R	Обратный праймер	TCAACAGTTGTTAATCCTCCACGT
SEQ ID NO:4	D-CL-FAD3c-FAM	Зонд для детектирования мутантного fad-3c	6FAM-CAGAGGCAAGATAAGT-MGB
SEQ ID NO:5	D-CL-FAD3c-VIC	Зонд для детектирования fad-3c дикого типа	VIC-ACAGAGGCAAGGTAAGT-MGB

[0034] В анализе использовали образцы листьев NEX828 и Quantum. Для проверки данного анализа использовали ДНК из разводимых популяций канолы.

[0035] Аспекты рассматриваемого раскрытия включают способы конструирования и/или производства диагностических молекул нуклеиновой кислоты, которые приведены в качестве примера и/или предложены в настоящем описании. Конкретные TaqMan® праймеры и зонд были сконструированы, как подробно описано в настоящем описании, частично в соответствии с последовательностями ДНК, расположенными у конкретных SNP в гене fad-3c, указанных в настоящем описании, или поблизости от них против хода транскрипции или по ходу транскрипции.

[0036] Таким образом, в некоторых вариантах осуществления данное раскрытие относится к определению зиготности растений канолы, производящих масло. Рассматриваемое раскрытие частично относится к детектированию наличия SNP, указанных в настоящем описании, для того чтобы определять, содержит ли потомство от полового скрещивания представляющие интерес SNP, и зиготность потомства. Кроме того, включены способы детектирования зиготности, и они полезны, например, для соблюдения правил, требующих предпродажного разрешения и обозначения продуктов питания, получаемых из рекомбинантных сельскохозяйственных культур.

[0037] Рассматриваемое раскрытие частично относится к основанному на флуоресценции TaqMan® ПЦР-анализу по конечной точке, использующему эндогенный немутантный ген fad-3c в качестве контроля для высокопроизводительного анализа зиготности растений канолы.

[0038] Рассматриваемое раскрытие также частично относится к разработке биплексной TaqMan® ПЦР по конечной точке для анализа зиготности канолы. Кроме того, рассматриваемое раскрытие частично относится к разработке наборов для анализа селекции по гену канолы fad-3c.

[0039] В целом TaqMan®-анализы по конечной точке основаны на стратегии плюс/минус, в которой "плюс" обозначает, что образец положителен по анализируемому гену, а "минус" обозначает, что образец отрицателен по анализируемому гену. Данные анализы, как правило, используют один набор олигонуклеотидных праймеров и два олигонуклеотидных зонда, причем один зонд преимущественно гибридизуется с SNP мутировавшего fad-3c, а другой зонд преимущественно гибридизуется с последовательностью fad-3c дикого типа соответственно.

[0040] Преимущества, связанные с рассматриваемым раскрытием, включают уменьшение зависимости от качества и количества ДНК. Кроме того, рассматриваемое раскрытие не требует продолжительной начальной стадии денатурации, которая, если проведена неправильно, часто может приводить к неудаче других способов детектирования SNP. Дополнительно рассматриваемое раскрытие предлагает способ эффективного анализа большого количества образцов канолы высокопроизводительным образом в коммерческих условиях. Другим преимуществом рассматриваемого раскрытия является экономия времени. Рассматриваемый TaqMan®-анализ по конечной точке для анализа зиготности и скрещивания канолы предоставляет преимущества по сравнению с другими применяемыми форматами, особенно когда анализу подвергается большое количества образцов.

[0041] Данное раскрытие частично относится к анализу скрещивания растений. Данное раскрытие включает новые способы детектирования SNP в растениях канолы, которые влияют на уровни олеиновой и линоленовой кислот в рассматриваемых растениях.

[0042] Кроме того, может оказаться возможным детектировать наличие рассматриваемых SNP посредством других известных способов детектирования нуклеиновой кислоты, таких как ПЦР или гибридизация ДНК с применением зондов нуклеиновой кислоты, описанных в настоящем описании. В настоящем описании рассмотрены специфические к событию ПЦР-анализы (См. также Windels et al., (Med. Fac. Landbouww, Univ. Gent 64/5b:459462, 1999).

[0043] Как применяется в настоящем описании, термин "потомство" обозначает потомка любого поколения родительского растения.

[0044] Методы детектирования рассматриваемого раскрытия в сочетании с селекцией растений особенно полезны, например, для определения зиготности растений-потомков, после того как родительское растение, содержащее представляющий интерес SNP, скрещивают с другим растением. Рассматриваемые применение и способы полезны для программ селекции канолы, а также процессов контроля качества. Теперь можно изготавливать и применять наборы для детектирования с помощью ПЦР для линий канолы, использующие способы и анализы, раскрытые в настоящем описании. Кроме того, рассматриваемое раскрытие может быть полезно для регистрации продуктов и учета продуктов.

[0045] Растение канолы, содержащее желаемую генетическую композицию fad-3c, можно вывести посредством сначала полового скрещивания первого родительского растения канолы, являющегося растением канолы, выращенным из семени любой из линий, упомянутых в настоящем описании, и второго родительского растения канолы, посредством чего создается множество растений первого потомства; и затем отбора растений первого потомства, несущих желаемые гены fad-3c, как раскрыто в рассматриваемом раскрытии; и самоопыления растения первого потомства, посредством чего создается множество растений второго потомства; и затем отбора из растений второго потомства растения, которое несет желаемые гены fad-3c в соответствии с рассматриваемым раскрытием. Данные стадии могут дополнительно включать возвратное скрещивание растения первого потомства или растения второго потомства со вторым родительским растением канолы или третьим родительским растением канолы. Затем можно сеять урожай канолы, содержащий семена канолы рассматриваемого раскрытия или их потомство.

[0046] Данное раскрытие дополнительно включает способы осуществления скрещиваний с использованием растения канолы, содержащего желаемую генетическую композицию fad-3c в качестве по меньшей мере одного родителя. Например, рассматриваемое раскрытие включает F₁-гибридное растение, имеющее в качестве одного или обоих родителей любое растение канолы, содержащее желаемую генетическую композицию fad-3c. Также в пределах рассматриваемого раскрытия лежат семена, получаемые посредством таких гибридов F₁. Данное раскрытие включает способ идентификации семян гибрида F₁ посредством скрещивания образца растения с другим (например инбредным родительским) растением и сбора и анализа получаемых семян гибрида с применением способа рассматриваемого раскрытия. Растения канолы, которые применяют для получения гибрида F₁, могут представлять собой или материнскую форму, или отцовскую форму.

[0047] Также следует понимать, что можно получать трансгенные растения, содержащие гены fad-3c, раскрытые в настоящем описании. Дополнительно, трансгенные растения, имеющие характеристики гена fad-3c, раскрытые в настоящем описании, можно скрещивать с растением, содержащим другую генетическую композицию, тем самым создавая потомство, содержащее независимо сегрегирующиеся экзогенные гены. Самоопыление соответствующего потомства может производить растения, которые являются гомозиготными по добавленным экзогенным генам. Также предусмотрены возвратное скрещивание с родительским растением и ауткроссинг с нетрансгенным растением, как и вегетативное размножение. В данной области техники известны другие способы разведения, обычно используемые для различных признаков и культур. Возвратное скрещивание применяют для переноса генов легко интрогрессируемых высоко наследуемых признаков в желаемый гомозиготный культивар или инбредную линию, представляющие собой рекуррентного родителя. Источник признака, который должен быть перенесен, называют родителем-донором. Ожидается, что получаемое растение имеет атрибуты рекуррентного родителя (например, культивар) и желаемый признак, перенесенный от родителя-донора. После первоначального скрещивания выбирают особи, обладающие фенотипом родителя-донора, и повторно скрещивают их (подвергают возвратному скрещиванию) с рекуррентным родителем. Ожидается, что получаемый родитель имеет атрибуты рекуррентного родителя (например, культивар) и желаемый признак, перенесенный от родителя-донора. Способ рассматриваемого раскрытия предлагает высокопроизводительный основанный на флуоресценции TaqMan® ПЦР-анализ по конечной точке для детектирования трансгена fad-3c в растениях-потомках и для определения уровня зиготности растений-потомков.

[0048] Способы настоящего раскрытия, например олигонуклеотидные праймеры и зонды, можно использовать для способов маркерзависимой селекции (MAB). Способы настоящего раскрытия, например олигонуклеотидные праймеры и зонды, можно использовать с родственными способами анализа (анализами полиморфизма длины амплифицированных фрагментов (AFLP), анализами полиморфизма длины рестрикционых фрагментов (RFLP), анализами случайно амплифицируемой полиморфной ДНК (RAPD)), которые идентифицируют генетически связанные агрономически полезные признаки посредством детектирования SNP или простых повторяющихся последовательностей (SSR) с применением публично доступных протоколов, которые известны в данной области техники. SNP, раскрытые в настоящем описании, можно отслеживать в потомстве от скрещивания с растением канолы рассматриваемого раскрытия (или потомства от него и любого другого культивара или сорта канолы) с применением MAB-способов. Молекулы ДНК можно использовать в качестве маркеров для данного признака, и MAB-способы, которые хорошо известны в данной области техники, можно использовать для отслеживания SNP в растениях канолы, где по меньшей мере одно растение канолы рассматриваемого раскрытия или его потомство представляет собой родителя или предка. Способы настоящего раскрытия можно использовать для идентификации любого сорта канолы, имеющего рассматриваемые SNP, раскрытые в настоящем описании.

[0049] Способы рассматриваемого раскрытия включают способ создания растения канолы, содержащего комбинацию SNP, указанных в настоящем описании, причем упомянутый способ содержит скрещивание с растением рассматриваемого раскрытия. Более конкретно, упомянутые способы могут содержать скрещивание двух растений рассматриваемого раскрытия или одного растения рассматриваемого раскрытия и любого другого растения. Иллюстративные способы могут дополнительно содержать отбор потомства от упомянутого скрещивания посредством анализа упомянутого потомства на SNP рассматриваемого раскрытия, детектируемого в соответствии с рассматриваемым раскрытием. Например, рассматриваемое раскрытие можно использовать для отслеживания зиготности растений канолы на протяжении циклов скрещивания с растениями, имеющими другие желаемые признаки, такие как агрономические признаки, такие как исследованные в настоящем описании в различных примерах. Растения, содержащие рассматриваемые SNP и желаемые признаки, можно также, например, детектировать, идентифицировать, отбирать и быстро использовать в последующих циклах скрещивания. Рассматриваемые SNP/признаки можно также комбинировать во время скрещивания и отслеживать в соответствии с рассматриваемым раскрытием с другими признаками, например с возможным признаком(ами) устойчивости к насекомым-вредителям и/или с признаками устойчивости к гербицидам. Одним вариантом осуществления последнего является растение, содержащее один или несколько рассматриваемых SNP в сочетании с геном, кодирующим устойчивость к гербициду, такому как глифосат.

[0050] В некоторых вариантах осуществления настоящее раскрытие включает последовательности ДНК, которые содержат смежный фрагмент, применимые в качестве последовательностей праймера для создания ампликонового продукта, диагностического для одного или нескольких растений канолы fad-3c.

[0051] Родственные варианты осуществления имеют отношение к последовательностям ДНК, которые содержат по меньшей мере 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25 или более смежных нуклеотидов части последовательностей ДНК, указанных в настоящем описании, или их комплементов. Такие последовательности можно использовать в качестве праймеров ДНК в способах амплификации ДНК. Ампликоны, получаемые с применением данных праймеров, могут быть диагностическими для любой комбинации и зиготности сортов канолы fad-3c, упоминаемых в настоящем описании. Следовательно, данное раскрытие также включает ампликоны, производимые такими праймерами ДНК и гомологичными праймерами.

[0052] В следующих вариантах осуществления рассматриваемое раскрытие включает способы создания SNP fad-3c рассматриваемого раскрытия, причем упомянутый способ содержит стадии: (a) полового скрещивания первой родительской линии канолы, содержащей один из SNP, раскрытых в настоящем описании и нес