Способ дезинтексикации организма в эксперименте

Способ дезинтексикации организма в эксперименте

Иллюстрации

Показать все

Реферат

 

ОПИСАНИЕ

ИЗОБРЕТЕНИЯ

К АВТОРСКОМУ СВИДЕТЕЛЬСТВУ (ii) 493227

Союз Советских

Социалистических

Республик (61) Дополнительное к авт. свид-ву (22) Заявлено 24.01.73 (21) 1873889/28-13 с присоединением заявки № (51) М Кл А 61k 17/00

G 01п 33/16

Совета Министров СССР ло делам изобретений и открытий (53) УДК 615.361.36 (088.8) Опубликовано 30.11.75. Бюллетень № 44

Дата опубликования описания 18.02.76 (72) Авторы изобретения

С. А. Гаспарян, Э. Ф. Малюгин, В. Г. Бруслик, А. И. Арчаков и В. М. Девиченский

2-й Московский ордена Ленина государственный медицинский институт (71) Заявитель (54) СПОСОБ ДЕЗИНТОКСИКАЦИИ

ОРГАНИЗМА В ЭКСПЕРИМЕНТЕ

Государственный комитет (23) Приоритет

Изобретение относится к медицине, а точнее к разработке методов лечения острой н хронической печеночной недостаточности.

Известен способ дезинтоксикации организма животного от продуктов распада путем внутрисосудистого введения крови и кровозаменителей.

С целью более полного выведения продуктов распада белков, жиров и углеводов в качестве детоксицирующих веществ вводят гомологичные и гетерологичные гепатоциты.

Способ осуществляют следующим образом.

Получают клеточную взвесь печени крысы.

Для этого отмывают печень крысы от крови раствором Хенкса путем конюлирования (в полой и портальной вене). Внутрь сосудов вводят ферментный раствор (200 мг гиалуронидазы на 100 мл раствора Хенкса). Затем печень в течение 10 мин инкубируют в ферментном растворе при 37 С. Для этого печень помещают в 40 мл ферментного раствора и при постоянном перемешив анин пропуска ют через среду воздуха.

После этого снимают или повреждают капсулу печени путем нанесения надрезов с последующей инкубацией в течение 20 мин. Печень вручную измельчают и вновь инкубируют в течение 10 мин.

Полученную взвесь пропускают через нейлоновый фильтр, и добавляют к фильтрату равное количество раствора Хенкса, а затем взвесь печеночных клеток центрифугируют.

Суспензию клеток хранят в растворе Хенкса, растворе среды 199.

5 Подсчитывают клетки среды с помощью камеры Горяева. Количество печеночных клеток в 1 мл суспензированного раствора достигало

20 млн.

Для проверки жизнеспособности клетки

10 применяют морфологический метод и световую микроскопию. Каплю суспензии изолированных гепатоцитов сразу после получения смешивают с раствором трипанового синего и микроскопируют. При этом клетки выглядят

15 хорошо сохранившимися, клеточные мембраны и ядра четко дифференцированы. Цитоплазма не прокрашивается. Для определения жизнеспособности используют также биохим и чески е м етоды.

20 Полученную клеточную взвесь используют при лечении печеночной недостаточности v животных с созданной моделью заболевания.

При сосудистом методе введения оптимальными дозами являются 1,0 мл, 0,5 мл и

25 0,25 мл на 100 г веса крысы (при концентрации клеточной взвеси 20 млн. в 1 мл); при внутрибрюшинном и внутриплевральном методах введения — дозы 1,5 мл, 1,0 мл, 0,5 мл и

0,25 мл на 100 г веса крысы. А при подкож30 юм введении рекомендуют применять 2,0 мл, 493227

Составитель T. Серебрянникова

Редактор М. Дмитриева

Техре 3. Тараненко Корректор И. Позняковская

Заказ 137/5 Изд. № 2039 Тираж 559 Подписное

ЦНИИПИ Государственног< комитета Совета Министров СССР по делам и:. обретений и открытий

113035, Москва, г i-35, Раушская наб., д. 4/5

Типограф: я, пр. Сапунова, 2

1,5 мл, 1,0 мл и 0,25 мл клеточной взвес 1 на

100 r веса животного.

Печеночную недостаточность создают п тем перевязки печеночной артерии или путев сужения портальной вены. При этом у пе вой группы клиническая картина развиваетс. по типу острой печеночной недостаточности, а у второй группы — по типу хронической r вченочной недостаточности.

Исследование модели острой печеночно1 недостаточности провели на 140 крысах пс четырем группам. При этом первой группе )существляли впутрисосудистое введение кле гочной взвеси; второй группе — внутрибрю1:инное введение клеточной взвеси; третьей r ynпе — внутриплевральное введение клето| ной взвеси; а четвертой группе — внутрисос дистое введение разрушенной клеточной взв;си.

При лечении моделей заболевания у жи,отных с острой печеночной недостаточностью оптимальными дозами являются 0,5 мл и 0,25 мл.

Исследование модели печеночной недо таточности провели на 50 крысах по двум г1 уппам: первой группе осуществляли внутрис судистое введение клеточной взвеси, а второй группе — внутрибрюшинное введение клеточной взвеси.

Оптимальной дозой клеточной взвеси при

5 лечении модели печеночной недостаточности является доза 1 мл клеточной взвеси на 100 г веса животного.

Наиболее рациональными методами введения клеточной взвеси являются впутрисосуди10 стое и внутрибрюшинное.

Терапевтические дозы клеточной взвеси при острых заболеваниях составляют 0,5 мл на

100 r веса животного, при концентрации

20 млн клеток в 1 мл; при хронических забо15 леваниях — 1,0 мл взвеси.

Предмет изобретения

Способ дезинтоксикации организма в эксперименте путем введения в организм деток20 сицирующих веществ, отличающийся тем, что, с целью более полного выведения продуктов распада белков, жиров и углеводов, в качестве детоксицирующих веществ вводят гомологичные и гетерологичные гепатоциты.