Способ получения ацетилированных рибонуклеозидов со свободными 5 @ -гидроксильными группами
Иллюстрации
Показать всеРеферат
E,В.Митрофанов, А.П.Кавуненко,. Э.A. 1Тяйвинен, Н.Г.Краснопевцева и Н.С.Сидорова
1
Ордена Трудового Красного Знамени институт высокомолекулярных соединений АН СССР и ордена Ленина и ордена Трудового
Красного Знамени Ленинградский государственный университет им. А.А.Жданова (72) Авторы изобретения (7l) Заявители (54) СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ АЦЕТИЛИРОВАННЫХ РИБОНУКЛЕОЗИДОВ
СО СВОБОДНЫМИ 5 -ГИДРОКСИЛЬНЫМИ ГРУППАМИ
Изобретение относится к усовершенствованному способу получения ацетилированных рибонуклеозидов со свободными 5 -гидроксильными группами, являющихся промежуточными соединениями для получения олигорибонуклеотидов заданной структуры с природной межнуклеотидной связью, обладающих биологической активностью.
Известен способ получения ацетилированных рибонуклеозидов со свобод1О ными 5 -гидроксильными группами (напl ример, 2, 3 -ди-0-ацетилуридина) ферментативным дефосфорилированием полностью ацетилированных рибонуклеозид-5 -фосфатов (2,3,ди-0-ацетилуридин- 5
-5 -фосфата) в присутствии щелочной фосфатазы в буферных растворах (в
0,2 М трис-НС1 буфере с рН 8) при
37 С в течение ч.
Целевой продукт выделяют бумажной хроматографией в системах изопропанол;конц, NH OH-H О (7: 1: 2), ВиОНАсОН-Н20 (5: 2: 3) . (Данные об активности фермента отсутствуют, используется коммерческий препарат) (1).
Недостатками этого способа явля" ются:. а) необходимость проведения процесса в области щелочных рН, где защитныв ацетильные группировки лабильны, что приводит к загрязнению целевого продукта продуктами частичного гидролиза ацетильных групп;
á) использование щелочной фосфатазы - внутриклеточного фермента, очист ка которой представляет содеи трудо" емкий и многостадийный процесс, не гарантирующий чистоты препарата, в) применение бумажной хроматографии для выделения целевого продукта
"что делает метод малопригодным для препаративного получения целевого продукта.
Цель изобретения — повышение качества целевого продукта и упрощение процесса.
883055
Эта цель достигается тем, что согласно способу получения ацетилированных рибонуклеозидов со свободными 5 -гидроксильными группами, ферментативное дефосфорилирование полностью ацетилированных рибонуклеозидl
-5-Фосфатов ведут в присутствии кислой фосфатаэы 1 иэ Saccharomyces cereviз1ае при рН 3,6-3,8 в растворе
0,05-0,1 M ацетата аммония, предпоч- 10 тительно е присутствии 0,8-30 ед. ферментной активности фосфатазы на
1 ммоль полностью ацетилированного рибонуклеозид-5 -фосфата, предпочтительно в течение 40 мин-25 ч, пред- ts почтительно при 20-37ОС в выделении целевого продукта хроматографией осуществляют на сефадексе LH-20 при соотношении высоты и диаметра колонки 15-20:1, соотношении нуклеозида и сорбента l ммоль: 100-105 мл, при этом элюцию ведут водой.
Существенными отличиями способа являются использование кислой фосфатазы из Saccharomyces cerevisiae ys в вышеуказанных условиях и применение для очистки целевого продукта колоночной хроматографии.
Использование способа получения ацетилированных рибонуклеозидов со свободными гидраксильными группами поэволяет„получить целевой продукт, не загрязненный продуктами разложения, а применение в способе колоночной хро;матографии для очистки целевого про- дукта упрощает способ и позволяет применить его для препаративного получения продукта °
Пример I. Раствор ммоль
6-й 2,3 -0-триацетиладенозин"5-фосфата в 50 мл 0,1 И ацетата аммония с рН 3,8 инкубируют с 0,8 ед.ф рментной активности кислой фосфатазы 1 иэ с
Saccharomyces cerevi iae при 37 С в течение 22 ч. За единицу ферментной активности применяют такое количество фосфатазы, которое дефосфолирует мкмол и-нитрофенилфосфата за !мин при 37 С и рН 3,7. Раствор упаривают в вакууме до объема 1 мл и наносят на колонку с сорбентом сефадекс LH-20 объемом 100 мл. Колонку промывают дистиллированной водой со скоростью "
25 мл/ч. Фосфатазу вымывают с 34 по
А0 мл элюата, что показано наличием в
SS элюате дефосфорилирующей активности.
Ацетат аммония вымывают с 53 по 65 мл элюата, что установлено по электропро. водности, 6-N, 2, 3 -О-триацетил,аденозин вымывают с 67 мл элюата, контроль ведется методом УФ-спектроскопии на длине волны 260 нм. Конечный продукт ведется лиофилизацией.
Выход 390 мг, т.е. 934 от теории.
Строение полученного продукта подтверждено анализом числа ацетильных групп в расчете на одну молекулу триацетильного производного рибонуклеоэи-да. Найдено 2,98 ацетильных групп на молекулу рибонуклеозида. Методом хроматографии на бумаге в системе бутанол-этанол-вода (4:1:5) не обнаружено следов других продуктов.
Пример 2. Процесс ведут в условиях примера 1, однако 1 ммоль 6-N,2,3 -0-триацетиладеноэин-5 -фосфата растворяют в 60 мл 0,05 M ацетата аммония с рН 3,6 и инкубируют в присутствии 2 ед. Ферментной активности кислой фосфатазы при 20 С в течение 25 ч. Конечный продукт выделяют лиофилизацией. Выход 398 мг, т,е. 953 от теории. При этом не найдено следов других продуктов.
Пример 3. Процесс ведут в условиях примера 1, однако 1 ммоль 6-й, 2, 3 -0-триацетиладейоэин-5 — фосфата растворяют в 50 мл 0,08 M ацетата аммония с рН 3,7 и инкубируют с 4,5 ед. Ферментной активности кислой фосфатазы в течение 5 ч. Выход
397 мг, т.е. 953 от теории. При этом не обнаружено следов других продуктов.
Пример 4. Процесс ведут в ус ловиях примера 3, однако 1 ммоль 6-М 2 3 О-триацетиладенозин=5 -фосфата
l инкубируют с 30 ед.ферментной активности кислой фосфатаэы в течение 40 мин.
8<><4 379 мг т е 904 от теории
Следов других продуктов не обнаружено
Пример 5. Процесс ведут в условиях примера 1, однако инкубации подвергают 1 ммоль 2-М, 2,3 -О-триацетилгуаноэин-5 -фосфата. Получают
372 мг,.т.е. 913 2-N,2,3 -0-триацетилгуаноэи а. Строение полученного продукта подтверждено анализом числа ацетильных групп в расчете на одну молекулу триацетильногс производного рибонуклеозида. Найдено 2,96 ацетильных групп на молекулу рибонуклеозида. Иетодом хроматографии на бумаге не обнаружено следов других продуктов.
П р и и е р 6. Процесс ведут в условиях примера 1, однако инкубации подвергают 1 ммоль 2,3 -0-диацетилуридин-5 -Фосфата. Получают
3055
Формула изобретения
Составитель Л.Никулина
Редактор Т.Кугрышева Техред И.Гайду Корректор О.Билак
Заказ 10114/32 Тираж 400 Подписное
ВНИИПИ Государственного комитета СССР по делам изобретений и открытий
113035, Москва,N-35, Раушская наб.,д.4/5
Филиал ППП "Патент", г. Ужгород, ул.Проектная,4
5 88
316 мг, т.е. 963 2,3 -0-диацетуридина. Строение полученного продукта подтверждено анализом числа ацетильных групп в расчете на одну молекулу диацетильного производного рибонуклеозида. Найдено 2,01 ацетильных групп на молекулу нуклеозида. Мето.дом хроматографии на бумаге не обнаружено следов других продуктов.
Способ получения ацетилированных рибонуклеозидов со свободными 5 -гидроксильными группами ферментативным дефосфорилированием в буферных растворах полностью ацетилированных рибонуклеозид-5 -фосфатов в присутствии фосфатаз, с последующим хроматографическим выделением целевого продукта, отличающийся тем, что, с целью повышения качества целевого продукта и упрощения процесса, дефосфорилирование ведут в присутствии кислой фосфатазы 1 из Saccharomyces cereviз1ае при рН 3,63,8 в растворе 0,05-0,1 И ацетата аммония, а хроматографическое выделение целевого продукта осуществляют на колонке с сефадексом LH-20 при соотношении высоты,и диаметра колонки з 15-20:1, соотношении нуклеозида и сорбента 1 ммоль : 100-105 мл, при этом элюцию ведут водой.
2. Способ по п.1, о т л и ч а юшийся тем, что ферментативное
lO дефосфорилирование осуществляют в течение 40 мин-25 час.
3. Способ по п.1, о т л и ч а юшийся тем, что ферментативное дефосфорилирование проводят при 2037 С.
4. Способ по п.l,î ò ë è ÷ à þшийся тем, что фермвнтативное дефорфорилирование проводят в при2в сутствии 0,8-30 единиц ферментной активности фосфатазы на 1 ммоль полностью ацетилированного рибонуклеозид-5 -Фосфата.
Источники информации, и принятые во внимание при экспертизе
Т.йс Иа, Y. Tàkåda, Н.Hayatsu.
"0n the Synthesi s of Uridi lуi --(3 5 )
-uridine Chem. Pharm. Bul l..,,12, 1503-1509 (1964) (прототип) .