1-этил-6-нитро-7-(4-метилпиперазинил)-4-оксо-1,4- дигидрохинолин-3-карбоновая кислота или ее гидрохлорид, обладающие антибактериальной активностью

Реферат

 

Изобретение касается замещенных дигидрохинолина (ЗГХ), в частности 1-этил-6-нитро-7-(4-метилпиперазинил)-4-оксо-1,4-дигидрохинолин-3-карбоновой кислоты и ее гидрохлорида, обладающих антибактериальной активностью. Цель - создание новых более активных веществ указанного класса. Синтез ведут кипячением этилового эфира 1-этил-6-нитро-7-хлор-4-оксо-1,4-дигидрохинолин-3-карбоновой кислоты в среде HCl в присутствии CH3COOH с последующим выделением соответствующей кислоты и обработкой N-метилпиперазином при кипячении в среде диметилформамида. Выход 72% , т. пл. 242 - 243°С, брутто-ф-ла C17H20N4O5. Полученный продукт переводят в гидрохлорид обработкой спиртовым раствором HCl. Выход 96%, т.пл. 261 - 262°С, брутто-ф-ла C17H20N4O5HCl.. Антибактериальная активность ЗГХ проявляется против грамположительных и грамотрицательных бактерий, патогенных грибов, возбудителей микроспории, трихофитин, кандидоза при максимально переносимой дозе 0,5 - 1,25 мкг/мл, токсичность LD50 2000 мг/кг (для С17H20N4O5) и 1000 мг/кг (для C17H2N4O8HCl ). 1 ил., 7 табл.

Изобретение относится к химии производных 4-хинолон-3-карбоновой кислоты и касается новых биологических активных соединений этого ряда, а именно 1-этил-6-нитро-7-(4-метилпеперазинил)-4-оксо- 1,4-дигидрохинолин-3-карбоновой кислоты или ее гидрохлорида общей формулы nHCl где n 0 (1а) или n 1 (1б), обладающих антибактериальной активностью. Целью изобретения являются новые производные ряда 6-нитро-7-пиперазинил-4-оксохинолины-3-карбоновой кислоты, обладающие улучшенными антибак- териальными свойствами по сравнению с ближайшими структурными аналогами. П р и м е р 1. Получение 1-этил-6-нитро-7-(4-метилпиперазинил)-4-оксо-1,4-дигидро- хинолин-3-карбоновой кислоты (1а). А. Получение исходного соединения 1-этил-6-нитро-7-хлор-4-оксо- 1,4-дигидрохинолин-3-карбоновой кислоты. К 32,45 г (0,1 моль) этилового эфира 1-этил-6-нитро-7-хлор-4- оксо-1,4-дигидрохинолин-3-карбоновой кислоты приливают 100 мл концентрированной соляной кислоты и 10 мл уксусной кислоты и кипятят в течение 1 ч. Смесь охлаждают, осадок отфильтровывают, промывают на фильтре водой, высушивают, очищают кристаллизацией из ДМФА. Получают 25,2 г (85% ) 1-этил-6-нитро-7-хлор-4-оксо-1,4- дигидрохинолин-3-карбоновой кислоты, т.пл. 292-294оС (с разложением). Найдено, C 48,22; H 3,04; N 9,40; Cl 11,86. C12H9ClN2O5 Вычислено, C 48,57; H 3,04; N 9,44; Cl 11,97. ИК-спектр, см-1: 1720 (COOH), 1615 (C-O), 1510 (NO2). Масс-спектр, m/e: М+ 296. Б. Получение целевого продукта 1а. К 12,6 г (0,05 моль) 1-этил-6-нитро-7-хлор-4-оксо-1,4- дигидрохинолин-3-карбоновой кислоты в 100 мл ДМФА прибавляют 25,0 г (0,25 моль) N-метилпиперазина и кипятят (130-140оС) в течение 1 ч. Смесь охлаждают, растворитель упаривают в вакууме, к остатку прибавляют 50 мл воды, доводят рН раствор до нейтральной реакции (по лакмусовой бумажке), экстрагируют хлористым метиленом (3х50 мл), который затем сушат сульфатом магния и отгоняют под вакуумом досуха. Остаток очищают кристаллизацией из ДМФА. Получают 12,96 г (72%) 1-этил-6-нитро-7-(4-метилпиперазинил)- 4-оксо-1,4-дигидрохинолин-3-карбоновой кислоты в виде кристаллического порошка красно-оранжевого цвета, т.пл. 242-243оС. Найдено, C 56,56; H 5,60; N 15,80. C12H20N4O5 Вычислено, C 56,67; H 5,56; N 15,56. ИК-спектр, см-1: 1722 (COOH), 1620 (C-O), 1510 (NO2). Масс-спектр, m/e: М+ 360. П р и м е р 2. Получение гидрохлорида 1-этил-6-нитро-7-(4-метилпиперзинил)-4-ок- со-1,4-дигидрохинолин-3-карбоновой кислоты (1б). К 3,6 г (0,01 моль) 1-этил-6-нитро-7-(4-метилпиперазинил)-4-оксо-1,4-дигидрохино-лин-3-карбоново й кислоты прибавляют спиртовой раствор соляной кислоты до рН 1 при комнатной температуре. Смесь перемешивают в течение 1 ч, осадок отфильтровывают, промывают на фильтре спиртом, очищают кристаллизацией из ДМФА. Получают 3,80 г (96%) гидрохлорида 1-этил-6-нитро-7-(4-метилпиперазинил-4-осо-1,4-дигидрохинолин- 3-карбоновой кислоты в виде темно-желтого кристаллического порошка, т.пл. 261-262оС. Найдено, C 51,48; H 5,0; N 10,62. C17H20N4O5 HCl Вычислено, C 51,45; H 5,04; N 10,59. ИК-спектр, см-1: 1735 (COOH), 1620 (C-O), 1510 (NO2). Изучение антибактериальной активности проводили в опытах ин витро в отношении грамотрицательных и грам- положительных бактерий возбудителей острых бактериальных инфекций и в отношении патогенных грибов, возбудителей микроспории, трихофитии, кандидоза (см. табл.1, 2, и 3). На чертеже приведен график влияния соединения 1а и оксалиниевой кислоты на репликацию клеток E. coli К-12. Ин витро оценивали влиянием соединений 1а и 1б на уровень синтеза ДНК клетками E. coli (см. чертеж), что является показателем механизма действия препарата. В опытах ин виво на интактных белых мышах оценивали переносимость соединений 1а и 1б при введении внутрижелудочно или под кожу. В опытах ин виво на инфицированных белых мышах изучали химиотерапевтическую активность соединений при инфекциях, вызванных E.typhi, E.coli, Pr. vulgaris. Актимикробную активность соединений в параллельных опытах ин витро и ин виво (за исключением опытов ин виво с Pr.vulgaris) сравнивали с активностью известного аналога 1-этил-6-нитро-7-пиперазинил-4-оксо-хинолин-3-карбоновой кислоты (2), для которой описана только активность ин витро в отношении трех видов микроорганизмов E.coli. Ps.aeruginosa, E.аureus. При изучении влияния 1а и 1б на биосинтез ДНК клетки E.coli в качестве препарата сравнения использована оксолиниевая кислота (1-этил-6,7-метилендиокси-4-оксо-1,4-дигидрохинолин-3-карбоновая кислота), являющаяся также, как и новые соединения, производным хинолонкарбоновой кислоты. Оксолиниевая кислота широко применяется в медицинской практике и является активным ингибитором синтеза ДНК бактериальных клеток. Этим свойством оксолиниевой кислоты в первую очередь определяется ее активность ин витро. Кроме того, оксолиниевую кислоту использовали в качестве препарата сравнения в опытах ин витро с Ps.aeruginosa, учитывая важную роль этого возбудителя в этиологии тяжелых гнойных процессов. Результаты изучения активности соединений 1а и 1б в опытах ин витро приведены в табл.1, 2 и 3 и на чертеже. Активность ин витро изучена в трех сериях опытов в отношении 12 видов патогенных и условно-патогенных бактерий и в отношении трех видов патогенных грибов. Таким образом, антимикробные свойства 1а оценены в отношении 70 штаммов микроорганизмов, 1б в отношении 14 штаммов. В первой серии опытов противомикробные свойства новых соединений в сравнении с аналогом 2 изучены на жидких питательных средах методом двухкратных серийных разведений с предварительным растворением веществ в диметилформамиде. В опытах с бактериями использовали бульон Хоттингера (120 мг. аминного азота), в опытах с грибами бульон Сабуро (с добавлением 2% глюкозы и 2% мальтозы). Активность изучена в отношении шести референс-штаммов бактерий (см. табл. 1) и трех клинических штаммов грибов M.canis 3/84, Tr.mentagsophytes (var.gypseum) 6/85 и C.albicans 1655, полученных из Центрального кожно-венерологического института. Инокулят для бактерий 1 105 колониеобразующих единиц (КОЕ) для грибов 1,5x x106 КОЕ. Величину минимальной подавляющей концентрации (МПК) оценивали в опытах с бактериями через 18-20 ч после культивирования при 35-37оС, в опытах с C.albicans через 24 ч и в опытах с дерматофитами через 5-6 сут после культивирования при 25-28оС. Результаты опытов приведены в табл.1. Как видно из табл.1, новые соединения проявляют высокую антибактериальную активность в отношении E.coli. Pr.vulgaris. E.aureus и Bac.subtilis, активны в отношении Ps.aeruginosa и Str.pyogenes, в опытах с E.coli, Pr.vulgaris, S.aureus, Bac.subtilis значительно более активны, чем соединения 2. Соединения 1а и 1б, как и известное соединение 2, оказались в проведенных опытах не активны в отношении возбудителя микроспории, трихофитии, кандидоза (МПК 500 мкг/мл). Оценка активности 1а в отношении M.tuberculosis на среде Сотона показала его значительно большую активность по сравнению с соединением 2 (МПК 23 и 1000 мкг/мл соответственно). Во второй серии опытов (см. табл.2) оценивали активность соединений 1а 1б в отношении 7 видов бактерий в опытах с высоковирулентными штаммами, используемым для воспроизведения экспериментальных генерализованных инфекций. Опыты проведены на жидкой питательной среде при величине инокулята, в 10 раз большей (1 106 КОЕ мл), чем в первой серии экспериментов. В числе штаммов три клинических полирезистентных штамма стафилококка, устойчивых к метициллину к оксациллину. Результаты приведены в табл.2. Как видно из табл.2, новые соединения высокоактивны в отношении штаммов S. typhi, E.coli. Shigella. S.aureus и превышают по активности соединение 2. В опытах с Ps.aeruginosa 165 и Pr.vulgaris не отмечено различия по активности при сопоставлении со структурным аналогом. В третьей серии опытов оценка активности соединения 1а в сравнении с соединением 2 проведена на твердой агаризованной среде. В данном случае условия эксперимента максимально приближены к условиям, в которых изучалась активность соединения 2 в отношении трех видов бактерий. В данной серии опытов использован агар АГВ и метод двухкратных серийных разведений. Посев бактерий производили с применением штамма-репликатора по Sturs. Для приготовления инокулята использовали взвесь суточных бульонных культур бактерий с концентрацией микробных клеток в пятне, соответствующей 104 КОЕ/мл. В этих экспериментах проведены расширенные опыты с 50 клиническими и эталонными штаммами бактерий. Посевы инкубировали при 35-37оС 18-20 ч. Полученные результаты приведены в табл.3. Как видно из табл.3, активность нового соединения 1а в отношении стафилококков, штаммов кишечной палочки, клебсиелл, иерсиний, спорообразующих грамположительных аэробных палочек (Bac.subtilis, Bac.cereus) существенно превышала активность соединения 2. В опытах с синегнойной палочкой для большинства штаммов различия в активности соединений 1а и 2 были несущественными. Анализируя опубликованные данные для известного соединения 2 сравнительно с полученными данными, необходимо указать, что для отдельных штаммов E. coli, E.aureus и Ps.aeruginosa получены совпадающие значения (МПК 0,78-1, 12,5-15,6 и 25-31,2 мкг/мл соответственно). Незначи- тельные колебания находятся в пределах возможной ошибки опыта или особенностей методики с учетом свойств штаммов и величины изученных концентраций. Изучение влияния соединений 1а и 1б на биосинтез ДНК в клетках. Исходя из высокой антибактериальной активности соединений 1а и 1б ин витро, изучали влияние соединений 1а и 1б на биосинтез ДНК в клетках бактерий на модели репликации ДНК клеток E.coli. В литературе не описано влияние 6-нитропроизводных 4-хинолон-3-карбоновой кислоты на синтез ДНК бактериальных клеток. Препаратом сравнения были оксолиниевая кислота, широко применяющаяся в медицинской практике, производное хинолонкарбоновой кислоты, высокоактивный ингибитор синтеза ДНК бактерий (специфический ингибитор ДНК-гиразы). Опыты проведены в культурой E.coli К-12, находившейся в фазе логарифмического роста. Влияние 1а и 1б на биосинтез ДНК оценивали по включению 9Н-тимидина в кислотонерастворимую фракцию клеток E.coli. Культуру E.coli К-12 на синтетической среде (5 108 клеток/мл), меченную 3Н-тимидином (конечная концентрация 20 мкл/мл), инкубировали с соединениями 1а и 1б или с оксолиниевой кислотой в концентрациях 0,1, 1, 10 и 100 мкг/мл в течение 30 мин при 37оС при встряхивании. После окончания инкубации отбирали пробы по 1 мл, к которым добавляли аликвотное количество 10%-ной трихлоруксусной кислоты (ТХУ). После фильтрации на миллипоровых фильтрах (N 4) пробы высушивали и помещали во флаконы с толуольным сцинтиллятором и измеряли радиоактивность в счетчике Delta (Tracon, США). Уровень ингибирования биосинтеза ДНК определяли по снижению включения 3Н-тимидина в кислотонерастворимую фракцию клеток E.coli. Проведенные исследования впервые показали ингибирующее действие 6-нитропроизводных хинолонкарбоновой кислоты на биосинтез ДНК (см. чертеж). Как видно из чеpтежа, подавление включения тимидина при действии соединения 1а проявлялось в концентрациях 01,-10 мкг/мл. В проведенных условиях опыта ингибирующее действие соединения 1а в отношении биосинтеза ДНК во всех изученных концентрациях значительно превышало действие оксолиниевой кислоты специфического ингибитора ДНК-гиразы. Активность соединения 1б по степени ингибирования синтеза ДНК была в параллельных опытах сравнима с активностью соединения 1а. При сравнительном изучении активности ин витро соединений 1а и 1б и оксолиниевой кислоты показано, что изученные 6-нитропроизводные 4-хинолон-3-карбоновой кислоты в 16-32 раза более активны ин витро, чем оксолиниевая кислота в отношении Ps.arcruginosa. Опыты проведены с двумя штаммами Ps.acruginosa, МПК для соединений 1а и 1б составляют 15,6-31,2 мкг/мл, для оксолиниевой кислоты 500 мг/мл. Эти данные показывают важное значение нитрогруппы в положение 6 цикла для повышения антибактериальной активности. Результаты изучения активности соединений 1а и 1б в опытах ин виво на моделях острых бактериальных инфекций белых мышей приведены в табл.4, 5 и 6. Опыты проведены на 700 беспородных белых мышах массой 15-16 г по принятой методике на моделях с внутрибрюшинным заражением животных. Изучена активность соединений 1а и 1б сравнительно с аналогом 2 в опытах с инфекциями, вызванными брюшно-тифозной палочкой (штамм S.typhi 4446, заражающая доза 1х107 микробных клеток), кишечной палочкой (штамм E.coli М-17, заражающая доза 5х108 микробных клеток). Кроме того, изучена активность соединения 1а в опытах с протеем (штамм Pr.vulgaris N 1, инфицирующая доза 1,5х108 микробных клеток). Использованные в опытах инфицирующие дозы вызывали гибель 80-100% контрольных нелеченных животных. Активность соединений изучали в диапазоне до 50-600 мкг/мл при введении однократно через 30 мин после заражения per os (для нерастворимых соединений 1а и 2), внутрь и под кожу (для растворимого соединения 1б). Длительность наблюдения за животными 10 сут. Результаты приведены в табл.4, 5 и 6. Как видно из табл.4, соединения 1а и 1б проявляют высокий химиотерапевтический эффект при экспериментальной инфекции мышей, вызванной S.typhi, в том числе соединение 1б при введении под кожу. В аналогичных условиях опыта известный аналог 2 не активен. Как видно из табл.5, новые соединения высокоактивны при экспериментальной смертельной инфекции мышей, вызванной E.coli, в том числе соединение 1б активно при введении под кожу. В этих же условиях опыта известный аналог 2 практически не активен. Как видно из табл.6, соединение 1а активно при введении внутрь на модели смертельной инфекции мышей, вызванной Proteus vulgaris. Как видно из табл.7, соединения 1а и 1б малотоксичны и хорошо переносятся белыми мышами (беспородными интактными) в дозах до 2000 мг/кг при введении внутрижелудочно и под кожу (1а) и в дозах до 1000 мг/кг при введении под кожу (1б). LD50 для соединения 1а 2000 мг/кг при том и другом пути введения, для 1б 1000 мг/кг при введении под кожу. В опытах на инфицированных животных оба соединения хорошо переносятся в дозах до 400 мг/кг внутрь (1а) и под кожу (1б). В более высоких дозах переносимость на инфицированных животных не изучали, так как дозы 400 мг/кг для того и другого соединения оказывали в химиотерапевтических опытах высокий лечебный эффект. Таким образом, проведенные исследования показывают превосходство новых соединений (1а и 1б) по сравнению со структурным аналогом (2). Структурное отличие (сочетание нитрогруппы в положении 6 цикла и метилпиперазинилового остатка в положении 7) способствовало усилению активности ин витро в отношении сальмонелл, эшерихий, иерсиний, стафилококков, кроме того, отмечено расширение спектра за счет появления активности в отношении микробактерий туберкулеза (структурный аналог не активен). Наиболее важным преимуществом новых соединений 1а и 1б является проявление активности в условиях инфи- цированного организма на моделях бактериальных инфекций при введении внутрижелудочно (1а) и под кожу (1б). Структурный аналог (2) в аналогичных опытах ин виво не активен (см. табл.4 и 5). Новые соединения характеризуются низкой токсичностью: переносимые дозы для соединения 1а при однократном введении внутрь или под кожу до 2000 мг/кг, для соединения 1б до 1000 мг/кг при введении под кожу. Кроме того, впервые на примере соединений 1а и 1б установлена высокая степень ингибирования синтеза ДНК бактериальных клеток (E.coli) под влиянием 6-нитропроизводных 4-хинолон-3-карбоновой кислоты и значительное преимущество в степени ингибирования по сравнению с описанным в литературе производным хинолинкарбоновой кислоты активным ингибитором синтеза ДНК оксолиниевой кислотой (1-этил-1,4-дигидро-6,7-метилендиокси-4-оксохинолин-3-карбоновая кислота), широко применяющимся в медицинской практике лекарственным препаратом.

Формула изобретения

1. 1-Этил-6-нитро-7-(4-метилпиперазинил)-4-оксо-1,4-дигидрохинолин-3-карбоновая кислота или ее гидрохлорид общей формулы где n 0 или 1, обладающие антибактериальной активностью.

РИСУНКИ

Рисунок 1, Рисунок 2, Рисунок 3, Рисунок 4, Рисунок 5